Prorocentrum
Prorocentrum | ||||||||||||
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Systematik | ||||||||||||
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Wissenschaftlicher Name | ||||||||||||
Prorocentrum | ||||||||||||
C. G. Ehrenberg, 1834 |


Prorocentrum ist eine Gattung der Dinoflagellaten aus der Gruppe (Ordnung) Prorocentrales. Die Arten sind phototroph.[1]
Die Zellen in der Gattung Prorocentrum haben eine zweischalige, perforierte Theka mit Zellulose. Sie sind beweglich (motil), da sie zwei fast gleichlange Geißeln besitzen, die aber unterschiedliche Funktion haben; zwischen den beiden Geißeln befindet sich eine anteriore (vorn gelgene) Schuppe. Zusätzlich gibt es Trichozysten. Sie besitzen aber anders als die meisten Dinoflagellaten weder Cingulum noch Sulcus und sind wahrscheinlich die primitivsten Dinoflagellaten.
Merkmale
Die Zellen von Prorocentrum sind mit 15–100 µm klein bis mittelgroß. Die für viele Dinoflagellaten typische Merkmale, die Längsfurche (Sulcus) und die Querfurche (Cingulum), fehlen bei Prorocentrum. Die beiden apikalen (am Vorderende der Zelle sitzenden) Geißeln sind „heterodynamisch“: die eine ist nach vorne gerichtet, während die andere dazu neigt, sich um das Vorderende zu winden.
Die Zellen sind „bilateral thekat“, d. h. es gibt eine Theka aus hautsächlich zwei großen Platten, die als Valven bezeichnet werden. Weiterhin sitzen mehrere (7–14) kleine Platten in der Geißelregion am Apex (Vorderende) der Zelle. Hier steht meist auch ein starker Dorn. Arten, bei denen der Dorn nicht vorhanden ist, wurden früher zu der Gattung Exuviaella gestellt.[1] Die Theka ist glatt, hat aber bei einigen Arten ebenfalls noch einige kleine Dornen. Sie ist perforiert (porös), d. h. auf ihr sind Poren vorhanden. Beide Geißeln entspringen aus einer Pore.[2]
Die Zellen haben insgesamt eine kugelige (sphärische) oder länglich zusammendrückte (lanzettliche) Form; auch eine S-förmig gebogene (sigmoide) Gestalt kommt vor.[2]
Ökologie
Es gibt planktonische/pelagische (frei im Wasser schwebende) und benthische (am Boden lebende) Arten, einige sind epiphytisch. Die Prorocentrum-Arten kommen im Meer (Salzwasser) und Brackwasser weltweit (kosmopolitisch) vor; zwei Süßwasserarten sind nur aus Australien bekannt.[2]
Alle Arten sind phototroph und haben 1–2 Chloroplasten. Bei einigen Arten ist in der apikalen Region ein mikrotubulärer „Korb“ (englisch microtubular basket) vorhanden, der mit einer besonderen Form der Nahrungsaufnahme in Verbindung gebracht wird.[2] Es wurde vermutet, dass diese sich von anderen Dinoflagellaten ernähren,[3] aber lange Zeit gab es keinen Bericht über Phagozytose (AlgaeBase, Stand Februar 2025).[2]
Wie von Urban Tillmann et al. 2023 berichtet, konnte neben der phototrophen Ernährung bei den beiden Arten P. pervagatum und P. cordatum (wie schon kurz zuvor bei P. cf. balticum) neben phototropher Ernährung auch Mixotrophie nachgewiesen werden, sodass zumindest diese Arten dem Mixoplankton (mixotrophen Plankton) angehören. Diese Arten betreiben als häufige Strategie eine Schleimfallen-unterstützte Ernährung, indem sie (80–120 µm) große Schleimfallen produzieren, um ihre Beute von der Gattung Teleaulax (siehe T. amphioxeia, T. acuta) zu fangen.[4]
Die geschlechtliche Fortpflanzung erfolgt nicht durch Plasmogamie; stattdessen bilden die haploiden Isogameten einen Befruchtungsschlauch, durch den der Kern der männlichen Gamete in das Plasma der weiblichen Gamete injiziert wird. Der diploide Planozygote (Dinoflagellaten-Eizelle) repliziert ihre DNA und wird dadurch tetraploid. Durch zwei aufeinander folgende meiotische Teilungen entstehen Tetraden haploider vegetativer Zellen. Bei benthischen Arten ist auch eine Zystenbildung bekannt. Meer, Brackwasser, weltweit.[2]
Algenblüten, Toxine und Biolumineszenz
Einige Arten der Prorocentrum produzieren Toxine, die auch dem Menschen schaden können.ref name="Grzebyk1997" />[5][2]
Ein Beispiel ist die Art Prorocentrum cordatum (früher P. minimum)[6], hier wurden so genannte TTX-like compounds gefunden.[5] Diese Art ist auch für Algenblüten, sogenannte Rote Tiden (englisch red tides) verantwortlich, das Wasser ist dann rot gefärbt.[5][2] Einige Populationen dieser Art werden mit der diarrhöischen Schalentiervergiftung (englisch) diarrhetic shellfish poisoning) in Verbindung gebracht.[2]
P. lima und verwandte Arten der Gattung werden mit Ciguatera in Verbindung gebracht, sie enthalten nachweislich Okadasäure.[2]
Auch die Art Art P. micans kann Rote Tiden hervorrufen.[7] Es ist allerdings noch nicht geklärt, ob diese Art auch toxisch ist.[8]
Einige Arten sind zur Biolumineszenz fähig (Meeresleuchten).[7]
Systematik




Die Gattung Prorocentrum zählt zu der Familie Prorocentraceae. Es folgt eine Auswahl der Arten:[10]
Gattung Prorocentrum C. G. Ehrenberg, 1834(A,W,N)
- Prorocentrum adriaticum Schiller, 1918(A,W)
- Prorocentrum balticum (Lohmann) Loeblich III, 1970(A,W,N) [Exuviaella baltica Lohmann, 1908(N)]
- Prorocentrum cordatum (Ostenfeld) J. D. Dodge, 1976(A,W,N)[11][4] [Prorocentrum minimum (Pavillard) J.Schiller, 1933(W,N)[12][13], Exuviaella minima Pavillard, 1916(A,W,N)]
- Prorocentrum cornutum Schiller, 1918(A,W)
- Prorocentrum criophilum Gourvil & Gutierrez-Rodríguez, 2022(N)[14] – in der AlgaeBase ein Synonym für P. pervagatum.(A)
- Prorocentrum dentatum F. Stein, 1883(A,W,N)
- Prorocentrum gracile F. Schütt, 1895(A,W,N)
- Prorocentrum hoffmannianum M. A. Faust, 1990(A,W,N) [Prorocentrum maculosum M. A. Faust, 1993(W)]
- Prorocentrum lima (Ehrenberg) F. Stein, 1878(A,W)[9] [Cryptomonas lima Ehrenberg, 1860(N), Exuviaella lima(N)]
- Prorocentrum mexicanum Osorio-Tafall, 1942(A,W)
- Prorocentrum micans Ehrenberg, 1834(A,W,N)[15] (Typusart(W))
- Prorocentrum obtusum Ostenfeld, 1908(A,W)
- Prorocentrum pervagatum Tillmann, Hoppenrath & Gottschling, 2022(A,W,N)[4] [Prorocentrum sp. MGottschling-2022a(N), Prorocentrum criophilum Gourvil & Gutiérrez-Rodríguez 2022(A)[14]]
- Prorocentrum rostratum F. Stein, 1883(A,W,N)
- Prorocentrum sculptile M. A. Faust, 1994(A,W,N)
- Prorocentrum scutellum Schröder, 1900(A,W)
- Prorocentrum thermophilum F. Gómez, Tangcheng Li, Hu. Zhang & Senje Lin, 2022(A,W,N)[14]
- Prorocentrum vietnamensis J. S. Yoo & Fukuyo, 2004(W) [Prorocentrum vietnamense J. S. Yoo & Fukuyo, 2004(A,W)]
- (A) – AlgaeBase[2]
- (N) – Taxonomie des National Center for Biotechnology Information (NCBI)[16]
- (W) – World Register of Marine Species (WoRMS)[10]
- (N) – Taxonomie des National Center for Biotechnology Information (NCBI)[16]
Prorocentrum micans
Die Typusart Prorocentrum micans der Gattung[10] ist eine marine Art mit weltweiter Verbreitung.[15] Sie ist eng mit P. gracile und P. mexicanum verwandt.[17]
Die Art wurde 1834 von dem deutschen Naturforscher Christian Gottfried Ehrenberg zusammen mit der Gattung beschrieben;[18] sie ist die Typusart ihrer Gattung.[10]
Die Zellen sind vorne (anterior) gerundet und hinten (posterior) spitz zulaufend, und daher tropfen- oder blattförmig. Ihre Länge beträgt 15 bis 80 μm, die Breite 15 bis 50 μm. Sie haben einem apikalen (vorn befindlichen) Dorn auf der linken Thecalplatte; die beiden Theka sind mit jeweils 83 bis 139 Poren und Vertiefungen „verziert“. Es handelt sich um eine planktonische Art, die nicht giftig ist.[17]
Prorocentrum cordatum
Prorocentrum cordatum (ehemals P. minimum) wurde von Jana Kalvelage et al. 2024 untersucht (Stamm CCMP 1329). Die Art ist freilebend und bildet Algenblüten. Sie sticht durch ihre besonderen zellbiologischen Merkmale unter den photosynthetischen (Mikro-)Organismen des Meeres hervor. Die hochauflösende FIB/REM-Analyse ergab einen einzelnen großen Chloroplasten, der ca. 40 % des gesamten Zellvolumens einnimmt und eine durchgehend tonnenförmigen Struktur hat, und die Innenseite der Zellhülle vollständig auskleidet. Er umschließt ein einzelnes retikuläres Mitochondrium, den Golgi-Apparat, sowie verschiedene Speichereinschlüsse (englisch storage inclusions). Auffallend ist, dass P. cordatum einen großen Photosystem-Lichtsammel-Megakomplex von mehr als 1,5 MDa (Mega-Dalton) besitzt, dessen wesentliche Bestandteile die Photosysteme I und II (PSI, PSII), der Chloroplastenkomplex I und Chlorophyll a-b bindende Lichtsammelkomplexproteine sind. Grana fehlen im Chloroplasten; er unterscheidet sich von der sonst üblichen Trennung der PSI- und PSII-Komplexe, wie sie beispielsweise bei der Modellpflanze Ackerschmalwand (Arabidopsis thaliana) vorzufinden sind. Insgesamt unterscheidet sich die Zusammensetzung der Komplexe PSI und PSII, sowie der pigmentbindende Proteine (PBPs) von P. cordatum deutlich von denjenigen in A. thaliana, mit Ausnahme der Kernelemente der ATP-Synthase und des cytb6f-Komplexes. Darüber hinaus wurde eine hohe Anzahl von PBPs nachgewiesen, die einen großen Anteil (∼65 %) des gesamten Proteoms ausmachen. Man nimmt an, dass diese P. cordatum eine flexible Anpassung an sich ändernde Lichtverhältnisse ermöglichen, wodurch der Art eine große ökologische Bedeutung zukommen dürfte.[11]
Bildergalerie
- P. pervagatum Stamm LP-D10 (A-P,R) bzw. Stamm PM-01 (Q). Nahrungsaufnahme per Pedunkel in Licht- (A-J,M) oder Epifluoreszenzmikroskopie (K,L,N-R).
- P. cordatum, Stamm BS 4-A5. Nahrungsaufnahme per Pedunkel.
- Vorgeschlagene Reihenfolge der Ereignisse, die zur Bildung der Schleimfalle durch P. pervagatum führen.
Weblinks
- Prorocentrum (Dinoflagellate) flagella, Youtube.
- [[Encyclopedia of Life|eoL]: Prorocentrum
Genutzte Literatur
- Robert Hofrichter (Hrsg.): Das Mittelmeer II/1. 2003, ISBN 3-8274-1090-8
Einzelnachweise
- ↑ a b Deutsche hydrographische Zeitschrift: German journal of hydrography. Supplement, Bände 5–6. Bundesamt für Seeschiffahrt und Hydrographie, Hamburg, Rostock
- ↑ a b c d e f g h i j k AlgaeBase: Genus Prorocentrum Ehrenberg, Details: Prorocentrum Ehrenberg, 1834 (Genus).
- ↑ Karl G. Grell: Protozoologie. 2. Auflage. Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New York 1968; doi:10.1007/978-3-662-12841-1, Epub 3. Oktober 2013.
- ↑ a b c Urban Tillmann, Aditee Mitra, Kevin J. Flynn, Michaela E. Larsson: Mucus-Trap-Assisted Feeding Is a Common Strategy of the Small Mixoplanktonic Prorocentrum pervagatum and P. cordatum (Prorocentrales, Dinophyceae). In: MDPI: Microorganisms, Band 11, Nr. 7, Special Issue 10th Anniversary of Microorganisms: Past, Present and Future, ISSN 2076-2607, 1. Juli 2023, S. 1730; doi:10.3390/microorganisms11071730, PMID 37512902, PMC 10384473 (freier Volltext), ResearchGate:372082337 (englisch).
- ↑ a b c Inés Rodríguez, Amparo Alfonso, Eva Alonso, Juan A. Rubiolo, María Roel, Aristidis Vlamis, Panagiota Katikou, Stephen A. Jackson, Margassery Lekha Menon, Alan Dobson, Luis M. Botana: The association of bacterial C9-based TTX-like compounds with Prorocentrum minimum opens new uncertainties about shellfish seafood safety. In: Scientific Reports, Band 7, Nr. 40880, 20. Januar 2017; doi:10.1038/srep40880 (englisch).
- ↑ Daniel Grzebyk, A. Denardou, Brigitte Berland, Yves François Pouchus: Evidence of a new toxin in the red-tide dinoflagellate Prorocentrum minimum. In: Journal of Plankton Research. Volumen 19, Nr. 8, 1. August 1997, S. 1111–1124; doi:10.1093/plankt/19.8.1111 (englisch).
- ↑ a b Doris Freudig (Red.): Lexikon der Biologie (Allgemeine Biologie - Pflanzen - Tiere, in fünfzehn Bänden). Spektrum, Akademischer Verlag, Heidelberg 2004, ISBN 3-8274-0341-3, 9783827403285 (Prae - Spind). Dazu:
- Prorocentrum. Lexikon der Biologie (spektrum.de).
- ↑ WoRMS: Prorocentrum micans Ehrenberg, 1834 (Speies). Typetaxon.
- ↑ a b Mustapha Ibghi, Benlahcen Rijal Leblad, Mohammed L’Bachir El Kbiach, Hicham Aboualaalaa, Mouna Daoudi, Estelle Masseret, Emilie Le Floc’h, Fabienne Hervé, Gwenael Bilien, Nicolas Chomerat, Zouher Amzil, Mohamed Laabir: Molecular Phylogeny, Morphology, Growth and Toxicity of Three Benthic Dinoflagellates Ostreopsis sp. 9, Prorocentrum lima and Coolia monotis Developing in Strait of Gibraltar, Southwestern Mediterranean. In: MDPI: Toxins, Band 16, Nr. 1; 16. Januar 2024, S. 49, Special Issue Harmful Algal Blooms and Microalgae from Ecology to Control Strategies; doi:10.3390/toxins16010049 (englisch).
- ↑ a b c d WoRMS: Prorocentrum Ehrenberg, 1834 (Genus).
- ↑ a b Jana Kalvelage, Lars Wöhlbrand, Jennifer Senkler, Julian Schumacher, Noah Ditz, Kai Bischof, Michael Winklhofer, Andreas Klingl, Hans-Peter Braun, Ralf Rabus: Conspicuous chloroplast with light harvesting-photosystem I/II megacomplex in marine Prorocentrum cordatum. In: Plant Physiology, Band 195, Nr. 1, Mai 2024, S. 306–325; doi:10.1093/plphys/kiae052, Epub 8. Februar 2024 (englisch). Dazu:
- Scientists Unravel the Unusual Cell Biology Behind Toxic Algal Blooms. Auf: SciTechDaily vom 12. März 2024.
- ↑ Spied by Satellite: Phytoplankton Factory in the Argentine Sea. Auf: SciTechDaily vom 10. Januar 2021. Quelle: NASA Earth Observatory.
- ↑ Koray Özhan, Sibel Bargu: Responses of sympatric Karenia brevis, Prorocentrum minimum, and Heterosigma akashiwo to the exposure of crude oil. In: Ecotoxicology, Band 23, Nr. 8, 10. Juni 2014, S. 1387–1398; doi:10.1007/s10646-014-1281-z, PMID 25009015 (englisch).
- ↑ a b c Fernando Gómez, Priscillia Gourvil, Tangcheng Li, Yulin Huang, Huan Zhang, Lucie Courcot, Luis F. Artigas, Emilio Soler Onís, Andrés Gutiérrez-Rodríguez, Senjie Lin: Molecular phylogeny of the spiny-surfaced species of the dinoflagellate Prorocentrum with the description of P. thermophilum sp. nov. and P. criophilum sp. nov. (Prorocentrales, Dinophyceae). In: Journal of Phycology, Band 59, Nr. 1, Februar 2023, S. 70–86; doi:10.1111/jpy.13298, ResearchGate:365150591, PMID 36333277, Epub 4. November 2022 (englisch).
- ↑ a b AlgaeBase: Prorocentrum micans Ehrenberg 1834 (Species).
- ↑ NCBI Taxonomy Browser: Prorocentrum, Details: Prorocentrum.
- ↑ a b Eréndira Julieta Cohen Fernández: Morfología externa del completo Prorocentrum micans, P. gracile y P. sigmoides y filogenia molecular de Prorocentrum (Dinoflagellata) del Pacífico Mexicano. Thesis (Doktorarbeit), Ciencias Biologicas y de la Salud (Biologie und Gesundheitswissenschaften), Universidad Autónoma Metropolitana, Ciudad de México (Mexico City), Mexiko, 7. Januar 2011; 8574634 auf Yumpu (yumpu.com), doi:10.24275/uami.w0892b13f (spanisch).
- ↑ Christian Gottfried Ehrenberg: Dritter Beitrag zur Erkenntniss grosser Organisation in der Richtung des kleinsten Raumes. In: Abhandlungen der Königlichen Akademie Wissenschaften zu Berlin, Physikalische Klasse, Band 1833, S. 145–336, Tafeln I-XIII., Nr. 1, 1834, S. 225–380; AlgaeBase:21419, WoRMS:239910, PDF (AlgaeBase), PDF (WoRMS). Mündlich vorgetragen im Juli 1832, veröffentlicht als Preprint/Separat im Mai 1834 und veröffentlicht in der Zeitschrift im Jahr 1835. Effektives Datum: Mai 1834.
Auf dieser Seite verwendete Medien
Autor/Urheber: Urban Tillmann, Aditee Mitra, Kevin J. Flynn, Michaela E. Larsson, Lizenz: CC BY 4.0
Prorocentrum cordatum, strain BS 4-A5.
- (A) Cell in lateral view.
- (B,C) Epifluorescence view of chloroplasts (blue light excitation) of cells in lateral (B) or ventral (C) view.
- (D–H). Mucus traps in dark-field (D,E,F) or bright-field (G,H) illumination, loaded with Teleaulax amphioxeia.
- (I–P) Peduncular feeding in light (I–L,O) or epifluorescence (M,N,P) microscopy.
- (I–K) Different cells in lateral (I), apical (J), or ventral (K) view with a Teleaulax prey cell attached in the apical position (arrow in (K) points to the extruded peduncle).
- (L) The same cell as in (K) shortly after feeding where the extruded peduncle is clearly visible (arrow).
- (M–P) Presence of food vacuoles after feeding on Teleaulax.
- (O,P) The same formalin-preserved cell in bright-field and epifluorescence view, displaying multiple food vacuoles.
Autor/Urheber: Urban Tillmann, Aditee Mitra, Kevin J. Flynn, Michaela E. Larsson, Lizenz: CC BY 4.0
Prorocentrum pervagatum, strain LP-D10. Detailed view of a turning cell attached with the longitudinal flagellum. Note the double loop appearance of the transverse flagellum (arrow). Scale bar = 5 µm
Autor/Urheber: Urban Tillmann, Aditee Mitra, Kevin J. Flynn, Michaela E. Larsson, Lizenz: CC BY 4.0
Prorocentrum pervagatum strain LP-D10 (A–P,R) or strain PM-01 (Q). Peduncle feeding in light (A–J,M) or epifluorescence (K,L,N–R) microscopy.
- (A) A cell just before attachment of the peduncle (arrow).
- (B–D) Different cells in lateral (B,C) and ventral (D) view with a Teleaulax prey cells attached via the peduncle in the apical position. Note the peduncle (arrow in (B)).
- (E) Two P. pervagatum cell having exhausted the contents of the same Teleaulax prey cell; note the peduncles (arrows) attached to the remains of the prey.
- (F–H) Time series of a P. pervagatum cell ingesting Teleaulax. Note the presence of two previous internal food vacuoles (arrows in F) before starting the new ingestion leading to a new vacuole, so that three internal food vacuoles are visible at a late stage of peduncular feeding (arrows in (H)).
- (I–L) The same cell in early (I,K) and late (J,L) stage of peduncular feeding as viewed in bright-field (I,J) or epifluorescence (K,L) light. One internal food vacuole is visible after ingestion.
- (M,N) The same peduncular feeding cell in lateral view under bright-field (M) or epifluorescence (N) view, note the yellow fluorescence of the externally attached Teleaulax cell and multiple internal food vacuoles.
- (N–R) Epifluorescence view of food vacuoles of P. pervagatum cells fed with Teleaulax (N–Q) or Rhodomomas (I).
- (Q) illustrates food uptake by the P. pervagatum type strain PM-01.
Autor/Urheber: Mustapha Ibghi, Benlahcen Rijal Leblad, Mohammed L’Bachir El Kbiach, Hicham Aboualaalaa, Mouna Daoudi, Estelle Masseret, Emilie Le Floc’h, Fabienne Hervé, Gwenael Bilien, Nicolas Chomerat, Zouher Amzil, Mohamed Laabir, Lizenz: CC BY 4.0
Cells of Prorocentrum lima PLCM17 strain observed under inverted photonic microscope (A,B), single cell after calcofluor staining. V-shaped right valve (C) and left valves (D).
Autor/Urheber: James B. Riding, Robert A. Fensome, Marie-Odile Soyer-Gobillard, Linda K. Medlin, Lizenz: CC BY-SA 4.0
Course of sexual reproduction phases of the dinoflagellate Prorocentrum micans.
(A)–(I): Haploid vegetative cells functioning as isogametes (A) become paired by means of their respective apical spines (B); then the donor cell injects its nucleus with stretched chromosomes into the receiver cell (C). (B), (C), (F), (F’): In vivo DAPI staining cells: (B) corresponds to B, (C) to (C), F to (F). After the two nuclei merge, (D) the zygote is diploid (E) and crossing over of the chromosomes can occur. Chromosomes become completely unwound and stretched. In the resultant diploid nucleus (F), chromatin begins to spin round (chromatic cyclosis) giving a rounded shape to the nucleus, as shown in the photograph (F). (F’): Detail of chromosome disorganised structure in a Transmission Electron Microscopic (TEM) view during the nuclear spin. Only one meiotic division occurred (G, G’, H), leading to 2q DNA-containing cells (I).
Scale bar = 1 µm.
Reprinted/adapted with permission from Soyer-Gobillard et al.: New data on mating in an autotrophic dinoflagellate, Prorocentrum micans Ehrenberg. Vie Milieu 2003, 52, 167–175.
Autor/Urheber: Urban Tillmann, Aditee Mitra, Kevin J. Flynn, Michaela E. Larsson, Lizenz: CC BY 4.0
Prorocentrum pervagatum, strain LP-D10. Cell in lateral view. Scale bar = 5 µm
Autor/Urheber: Urban Tillmann, Aditee Mitra, Kevin J. Flynn, Michaela E. Larsson, Lizenz: CC BY 4.0
Suggested sequence of events leading to the formation of the mucus trap by Prorocentrum pervagatum.
- (A) Solitary cells (cell length ca. 13 µm) swim in a spiralling style, releasing mucus from the large pores.
- (B–D) Under certain conditions, most likely of very low turbulence, the spiral swimming style coupled with random changes in direction lead to a process of mucus deposition and physical pushing by the Prorocentrum cell that leads to the formation of a hollow mucus ball. As the mucus ball takes shape other particles, and notably motile potential prey, become stuck to the outside surface. Towards completion of the trap, with the Prorocentrum now located within the hollow ball near one of the few remaining openings, the continuing rotational swimming of the dinoflagellate draws water and particles in through the large opening (a “rotating position”), with water exiting through the porous mucus walls, leaving particles trapped on the inside of mucus ball.
- Trapped prey are immobilized by a combination of chemical (allelochemical) and physical (mucus threads) means, and may then be consumed (E). When the trap is vacated, the decaying remnants then sink, while the Prorocentrum builds another trap.
Autor/Urheber: Minami Himemiya, Lizenz: CC BY-SA 3.0
Hydrofront of Dnieper-Bug Liman
Autor/Urheber: Cybergerac, Lizenz: CC BY-SA 4.0
field sample of Prorocentrum lima
Autor/Urheber: James B. Riding, Robert A. Fensome, Marie-Odile Soyer-Gobillard, Linda K. Medlin. Reprinted/adapted with permission from Janouškovec, J. et al.: Major transitions in dinoflagellate evolution unveiled by phylotranscriptomics. In: Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2016, 114, E171–E180., Lizenz: CC BY-SA 4.0
Scanning Electron Microscopic (SEM) view of Prorocentrum micans theca, Th. The view is dominated by the right valve, which is separated from the left valve (part of which is visible at the base of the image) by a longitudinal (sagittal) suture S. Numerous pores P are distributed through the theca. X = 3500.