Enzymkinetik

Die Enzymkinetik ist ein Teilgebiet der biophysikalischen Chemie. Sie beschreibt, wie schnell enzym katalysierte chemische Reaktionen verlaufen. Die Enzymkinetik findet breite Anwendung in Biologie und Medizin, da auch biologische Substrate (Reaktionspartner) – darunter solche, die im Menschen auftreten – untersucht werden. Ein Hauptziel der Enzymkinetik ist die Beschreibung der Konzentrationsabhängigkeit der Reaktionsgeschwindigkeit mit geeigneten Formeln, sowie die Bestimmung der dazugehörigen Parameter für ein bestimmtes Protein (Enzymaktivität und katalytische Effizienz). Da Enzyme dazu dienen, Reaktionen zu beschleunigen und zu lenken, ist die enzymkinetische Analyse zum Verständnis von Enzymfunktionen unerlässlich.

Theorie für Enzyme mit einer Substratbindungsstelle

Der Erste, der den Zusammenhang zwischen Substrat-Konzentration $[S]$ und Umsatzgeschwindigkeit eines Enzymes $v$ beschrieb, war der französische Physikochemiker Victor Henri 1902. Allerdings war die Bedeutung der Wasserstoffionenkonzentration für enzymatische Reaktionen damals noch nicht bekannt, erst nachdem Sørensen 1909 den pH-Wert definiert und die Pufferung eingeführt hatte, konnten der Deutsche Leonor Michaelis und seine kanadische Post-Doktorandin Maud Menten 1913 die Ergebnisse Henris experimentell bestätigen.^[1] Die Henri-Michaelis-Menten-Gleichung wurde 1925 von G. E. Briggs und J. B. S. Haldane verallgemeinert (Michaelis-Menten-Theorie).

Henris Schlüsselidee war, die enzymatische Reaktion in zwei Phasen zu zerlegen, die Bindung des Substrates S an das Enzym E und die Umsetzung des resultierenden Enzym-Substrat-Komplexes ES in Enzym und Produkt P:

{\begin{aligned}E+S{\underset {k_{-1}}{\overset {k_{1}}{\begin{smallmatrix}\displaystyle \longrightarrow \\\displaystyle \longleftarrow \end{smallmatrix}}}}ES{\overset {k_{cat}}{\longrightarrow }}E+P\end{aligned}}

\quad

(1)

Hierbei sind $k_{1},k_{-1},k_{cat}$ Geschwindigkeitskonstanten, die bei der kinetischen Herleitung des Massenwirkungsgesetzes (MWG) verwendet werden.^[2] Zur Beschreibung eines Reaktionsgleichgewichts der Bindungsreaktion hat die Gleichheit der Geschwindigkeiten von Hin- und Rückreaktion die Form:

k_{1}[E][S]=k_{-1}[ES];\quad \mid :[ES]\quad \mid :k_{1}

wobei $\textstyle [X]$ die Konzentration der Substanz $X$ bezeichnet. Durch die angegebenen mathematischen Operationen entsteht für die Bindungsreaktion die eingeführte Formulierung des MWGs:

{\frac {[E][S]}{[ES]}}={\frac {k_{-1}}{k_{1}}}=K_{\mathrm {d} }.\quad

(2)

Da die (nach Standard im Zähler notierten) Reaktionsprodukte aus einer Dissoziation des Enzym-Substrat-Komplexes hervorgehen, wird die Gleichgewichtskonstante $\textstyle K_{\mathrm {d} }$ als Dissoziationskonstante bezeichnet.

Wie aus Gleichung (2) hervorgeht, hat $\textstyle K_{\mathrm {d} }$ die Dimension einer Konzentration. Für die Substratkonzentration $\textstyle [S]=K_{\mathrm {d} }$ ist die Hälfte aller Enzymmoleküle an Substrat gebunden, die andere Hälfte ist frei; dies wird als Halbsättigung des Enzyms bezeichnet. (Die Weiterreaktion $\textstyle ES\longrightarrow E+P$ bleibt zunächst außer Betracht.)

Rechnung hierzu
$K_{\mathrm {d} }={\frac {[E][S]}{[ES]}};\quad$ (2) Einsetzen von $K_{\mathrm {d} }=[S]\neq 0$ : $[S]={\frac {[E][S]}{[ES]}};\quad \mid \cdot [ES]\quad \mid :[S]\neq 0$ $[ES]=[E]$ , wie behauptet.

$\textstyle K_{\mathrm {d} }$ ist umgekehrt proportional zur Affinität des Enzymes für das Substrat: Je besser das Enzym das Substrat bindet, umso niedriger ist die für eine Halbsättigung des Enzyms erforderliche Substratkonzentration.

Zur Beschreibung eines Reaktionsgleichgewichts der Reaktion (1) insgesamt hat die Gleichheit der Geschwindigkeiten von Hin- und Rückreaktion die Form:

k_{1}[E][S]=k_{-1}[ES]+k_{cat}[ES]=(k_{-1}+k_{cat})[ES];\quad \mid :[ES]\quad \mid :k_{1}

hierbei ist $k_{cat}$ die Geschwindigkeitskonstante der (als nicht umkehrbar vorausgesetzten) Reaktion $\textstyle ES\longrightarrow E+P$ . Durch die angegebenen mathematischen Operationen entsteht für die Reaktion (1) die eingeführte Formulierung des MWGs:

{\frac {[E][S]}{[ES]}}={\frac {k_{-1}+k_{cat}}{k_{1}}}=K_{m}.\quad

(3)

$K_{m}$ heißt Michaelis-Menten-Konstante. Zur Beschreibung der Reaktionsgeschwindigkeit $v$ der betrachteten Katalyse wird (für entsprechend geeignete Fälle) weiter vorausgesetzt:

Die Konzentration $[E]_{t}$ des insgesamt vorhandenen Enzyms ändert sich nicht und ist die Summe aus den Konzentrationen substratgebundenen und freien Enzyms, also $[E]_{t}=[E]+[ES]$ .
Die katalysierte Reaktion ist erster Ordnung, so dass ihre Geschwindigkeit zur Konzentration des Enzym-Substrat-Komplexes proportional ist, also $v=k_{cat}\cdot [ES]$ .
Eine maximale Reaktionsgeschwindigkeit $v_{\mathrm {max} }$ wird als Rechengröße eingeführt. Diese entspricht dem fiktiven Fall, dass sämtliches vorhandenes Enzym als Enzym-Substrat-Komplex vorliegt, also $v_{\mathrm {max} }=k_{cat}\cdot [E]_{t}$ .

Durch Einführung dieser Bedingungen lässt sich (3) in die Michaelis-Menten-Gleichung umformen, die $v$ in Abhängigkeit von der Substratkonzentration $[S]$ darstellt:

v={\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot [S]}{K_{m}+[S]}}\quad

Umformung
${\frac {v}{v_{\mathrm {max} }}}={\frac {k_{cat}\cdot [ES]}{k_{cat}\cdot [E]_{t}}}={\frac {[ES]}{[E]_{t}}}={\frac {[ES]}{[E]+[ES]}};$ um $\textstyle {\frac {[E][S]}{[ES]}}=K_{M}$ in den Bruch einzuführen, wird dieser mit $\textstyle {[S] \over [ES]}$ erweitert: ${\frac {v}{v_{\mathrm {max} }}}={\frac {[ES]}{[E]+[ES]}}={{[ES][S] \over [ES]} \over {[E][S] \over [ES]}+{[ES][S] \over [ES]}}\quad ={[S] \over K_{M}+[S]};\quad \mid \cdot v_{\mathrm {max} }$ $v={\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot [S]}{K_{m}+[S]}};\quad$ Michaelis-Menten-Gleichung

Der Graph dieser Gleichung ist Teil einer Hyperbel, die sich für zunehmende $[S]$ der waagerechten Asymptote $v=v_{\mathrm {max} }$ nähert.

Rechnung zur Klassifikation des Graphen als Teil einer Hyperbel; Betrachtung der Asymptoten
A. Da $v_{\mathrm {max} }$ und $K_{m}$ Konstanten sind, ist die Funktion $v=f_{1}([S])={\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot K_{m}}{[S]}};\quad [S]\in \mathbb {R}$ eine Hyperbel mit der waagerechten Asymptote $v=0$ für $[S]\to \pm \infty$ und der senkrechten Asymptote $[S]=0$ für $[S]\to 0$ . Verschiebung um $-K_{m}$ in $[S]$ -Richtung ergibt: $v=f_{2}([S])={\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot K_{m}}{[S]-(-K_{m})}}={\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot K_{m}}{K_{m}+[S]}}$ (Nachfolgende) Spiegelung an der [S]-Achse ergibt: $v=f_{3}([S])=-{\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot K_{m}}{K_{m}+[S]}}$ (Nachfolgende) Verschiebung um $+v_{\mathrm {max} }$ in $v$ -Richtung ergibt: $v=f_{4}([S])\quad =v_{\mathrm {max} }-{\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot K_{m}}{K_{m}+[S]}}\quad =v_{\mathrm {max} }\cdot (1-{\frac {K_{m}}{K_{m}+[S]}})\quad =v_{\mathrm {max} }\cdot {\frac {K_{m}+[S]-K_{m}}{K_{m}+[S]}}\quad ={\frac {v_{\mathrm {max} }\cdot [S]}{K_{m}+[S]}};$ da $f_{4}([S])$ durch eine Verkettung von Kongruenzabbildungen aus $f_{1}([S])$ erzeugt werden kann, ist $f_{4}([S])$ ebenfalls eine Hyperbel. Der Graph der Michaelis-Menton-Gleichung ist die Teilmenge von $f_{4}([S])$ , für die $[S]\geq 0$ ist. B. Die beiden zuerst genannten Kongruenzabbildungen ändern nichts an der waagerechten Asymptote der Hyperbel, die letztgenannte verschiebt sie um $+v_{\mathrm {max} }$ in $v$ -Richtung. Also hat $f_{4}([S])$ die Asymptote $v=v_{\mathrm {max} }$ für $[S]\to \pm \infty$ ; der in $f_{4}([S])$ enthaltenen Graphen der Michaelis-Menton-Gleichung strebt für $[S]\to +\infty$ gegen diese Asymptote. Die zuerst genannte Kongruenzabbildungen verschiebt die senkrechte Asymptote der Hyperbel um $-K_{M}$ in $v$ -Richtung, die beiden letztgenannten ändern nichts an ihr. Also hat $f_{4}([S])$ die Asymptote $[S]=-K_{M}$ für $[S]\to -K_{M}$ .

Wie aus Gleichung (3) hervorgeht, hat auch $\textstyle K_{m}$ die Dimension einer Konzentration. Für die Substratkonzentration $\textstyle [S]=K_{m}$ ist $\textstyle v={\frac {v_{\mathrm {max} }}{2}}$ .

Rechnung hierzu
Einsetzen von $K_{m}=[S]$ in die Michaelis-Menton-Gleichung: $\ v={v_{\mathrm {max} }\cdot [S] \over [S]+[S]}={v_{\mathrm {max} }\cdot [S] \over 2\cdot [S]}={\frac {v_{\mathrm {max} }}{2}}$ .

Zur Bestimmung von $v_{\text{max}}$ und $K_{m}$ aus Messreihen von $v$ und $[S]$ dienen computergestützte Verfahren wie die nichtlineare Regressionsanalyse (Simplex- oder Levenberg-Marquardt-Verfahren). Graphische Extrapolationsverfahren (Linearisierungen) wie etwa die doppelt-reziproke Auftragung nach Lineweaver und Burk sollten dafür nicht verwendet werden, da sie zu ungenau sind. Sie eignet sich jedoch sehr gut zur Präsentation der Ergebnisse enzymkinetischer Versuche.

Theorie für Enzyme mit mehreren Substratbindungsstellen

Die Hill-Gleichung und ihre Herleitung aus dem Massenwirkungsgesetz

Die Hill-Gleichung wurde ursprünglich von Archibald Vivian Hill eingeführt, um die Sauerstoffbindung an Hämoglobin in Abhängigkeit von verschiedenen Sauerstoffkonzentrationen mathematisch zu beschreiben.^[3] Die hier beschriebene Hill-Gleichung ist eine andere als die Hill-Gleichung zur Beschreibung der Muskelkontraktion, an deren Erstellung der gleiche Autor beteiligt war.^[4]

Obwohl die Bindung von Sauerstoff an Hämoglobin kein katalytischer Vorgang ist, lässt sich mit einer Hill-Gleichung auch die Kinetik enzymatischer Katalysen beschreiben, insbesondere auch solcher, deren Kinetik sich nicht mit einer Michaelis-Menten-Gleichung beschreiben lässt. Hier folgt eine Herleitung der Hill-Gleichung aus dem Massenwirkungsgesetz, die die Analogie zur Herleitung der Michaelis-Menten-Gleichung hervorhebt. Entsprechend bedeutet die Variable $n$ die Anzahl der Bindungsstellen, die ein Molekül Enzym für je ein Molekül Substrat bereithält, und ist damit eine positive natürliche Zahl. Die experimentell gefundenen Werte von $n$ weichen hiervon ab (s. u. "Der empirische Hill-Koeffizienten $n_{H}$ als Maß der Kooperativität von Enzymen").

Die Bindung von $n$ Molekülen Substrat an ein Enzym lässt sich modellieren mit:

{\begin{aligned}E+nS{\underset {k_{-1}'}{\overset {k_{1}'}{\begin{smallmatrix}\displaystyle \longrightarrow \\\displaystyle \longleftarrow \end{smallmatrix}}}}ES_{n}\end{aligned}}

\quad

(1')

Wie in Gleichung (1) sind $k_{1}',k_{-1}'$ Geschwindigkeitskonstanten, die bei der kinetischen Herleitung des Massenwirkungsgesetzes (MWG) verwendet werden. Zur Beschreibung eines Reaktionsgleichgewichts der Bindungsreaktion hat die Gleichheit der Geschwindigkeiten von Hin- und Rückreaktion die Form:

k_{1}'[E][S]^{n}=k_{-1}'[ES_{n}];\quad \mid :[ES_{n}]\quad \mid :k_{1}'\quad

hierbei ist $[E]$ die Konzentration freien Enzyms, $[S]$ die Substratkonzentration, $[ES_{n}]$ die Konzentration der Enzym-Substrat-Komplexe mit $n$ Molekülen Substrat. Der Exponent $n$ heißt Hill-Koeffizient. Durch die angegebenen mathematischen Operationen entsteht für die Bindungsreaktion die eingeführte Formulierung des MWGs:

{\frac {[E][S]^{n}}{[ES_{n}]}}={k_{-1}' \over k_{1}'}=K_{\mathrm {D} }.\quad

(2')

Analog der Dissoziationskonstante $K_{d}$ in Gleichung (2) heißt $K_{D}$ scheinbare Dissoziationskonstante. Das Adjektiv "scheinbar" trägt der Tatsache Rechnung, dass die experimentell gemessenen Werte für $n$ von den nach diesem Modell zu erwartenden abweichen.

Wie aus Gleichung (2') hervorgeht, hat die (neu einzuführende) Konstante

K_{A}=K{_{\mathrm {D} }}^{1 \over n}\Leftrightarrow K{_{A}}^{n}=K_{\mathrm {D} }\quad

(3')

die Dimension einer Konzentration. Für die Substratkonzentration $\textstyle [S]=K_{A}$ ist die Hälfte aller Enzymmoleküle an Substrat gebunden, die andere Hälfte ist frei; dies wird als Halbsättigung des Enzyms bezeichnet.

Rechnung
Gleichsetzen der Gleichungen (2') und (3') ergibt: ${\frac {[E][S]^{n}}{[ES_{n}]}}=\quad K_{\mathrm {D} }=\quad K{_{A}}^{n}\quad$ Einsetzen von $K_{A}=[S]$ : $[S]^{n}={\frac {[E][S]^{n}}{[ES_{n}]}};\quad \mid \cdot [ES_{n}]\quad \mid :[S]^{n}\neq 0$ $[ES_{n}]=[E]$ , wie behauptet.

$\textstyle K_{A}$ wird daher als Halbsättigungskonstante bezeichnet^[5] und auch $\textstyle K_{50}$ (für „50%“) geschrieben. $K_{A}$ ist (wie die Konstante $\textstyle K_{\mathrm {d} }$ der Michaelis-Menten-Gleichung) umgekehrt proportional zur Affinität des Enzymes für das Substrat: Je besser das Enzym das Substrat bindet, umso niedriger ist die für eine Halbsättigung des Enzyms erforderliche Substratkonzentration.

Wenn weiter vorausgesetzt wird,

dass sich die Konzentration $[E]_{t}$ des insgesamt vorhandenen Enzyms nicht ändert und die Summe aus den Konzentrationen substratgebundenen und freien Enzyms ist, also $[E]_{t}=[E]+[ES_{n}]$ ,

dann ist der Anteil $\theta$ substratgebundenen Enzyms an insgesamt vorhandenem mit Gleichung (2'):

\theta ={[ES_{n}] \over [E]_{t}}={[S]^{n} \over K_{D}+[S]^{n}};\quad

Hill-Gleichung

Rechnung
$\theta ={[ES_{n}] \over [E]_{t}}={[ES_{n}] \over [E]+[ES_{n}]};$ um $\textstyle {\frac {[E][S]^{n}}{[ES_{n}]}}=K_{\mathrm {D} }$ in den Bruch einzuführen, wird dieser mit $\textstyle {[S]^{n} \over [ES_{n}]}$ erweitert: $\theta ={[ES_{n}] \over [E]+[ES_{n}]}={{[ES_{n}][S]^{n} \over [ES_{n}]} \over {[E][S]^{n} \over [ES_{n}]}+{[ES_{n}][S]^{n} \over [ES_{n}]}}\quad ={[S]^{n} \over K_{\mathrm {D} }+[S]^{n}};\quad$ Hill-Gleichung

Um mit der Hill-Gleichung die Reaktionsgeschwindigkeit $v$ der Katalyse durch ein Enzym mit mehreren Bindungsstellen zu beschreiben, ist hinreichend, weiter vorauszusetzen:

Eine maximale Reaktionsgeschwindigkeit $v_{\mathrm {max} }$ wird als Rechengröße eingeführt. Diese entspricht dem fiktiven Fall, dass sämtliches vorhandene Enzym als Enzym-Substrat-Komplex vorliegt, also $\theta =1$ .
$v\leq v_{\mathrm {max} }$ ist zum Anteil $\theta$ substratgebundenen Enzyms an insgesamt vorhandenem proportional.

Dann hat die Proportionalität die Form

{\frac {v}{v_{\text{max}}}}=\theta ;\quad

(4)

Rechnung
Wegen der vorausgesetzten Proportionalität von $v$ und $v_{\text{max}}$ zu $\theta$ existiert ein Proportionalitätsfaktor $k$ so, dass: $v=k\cdot \theta \quad$ und $\quad v_{\text{max}}=k\cdot 1$ Damit ist das Verhältnis von $v$ zu $v_{\text{max}}$ : ${\frac {v}{v_{\mathrm {max} }}}={\frac {k\cdot \theta }{k\cdot 1}}=\theta \quad$ (4)

Gleichsetzen mit der Hill-Gleichung ergibt eine Gleichung, die $v$ in Abhängigkeit von der $n$ -ten Potenz $[S]^{n}$ der Substratkonzentration darstellt:

v={\frac {v_{\text{max}}\cdot [S]^{n}}{K_{D}+[S]^{n}}};\quad

(5)

Rechnung
Gleichsetzen von Gleichung (4) mit der Hill-Gleichung ergibt: ${\frac {v}{v_{\text{max}}}}=\theta ={[S]^{n} \over K_{D}+[S]^{n}};\quad \mid \cdot v_{\text{max}}$ $v={v_{\text{max}}\cdot [S]^{n} \over K_{D}+[S]^{n}}\quad$ (5)

Die Herleitung der Gleichung (5) ist der Herleitung der Michaelis-Menten-Gleichung größtenteils analog. Unterschiede sind:

Die Geschwindigkeitskonstante $k_{cat}$ der katalysierten Reaktion wird nicht in die Herleitung von Gleichung (5) einbezogen: $K_{D}$ hängt im Gegensatz zu $K_{M}$ formal nicht von $k_{cat}$ ab.
Die Ordnung der katalysierten Reaktion wird bei der Herleitung von (5) nicht explizit betrachtet.

Statt der beiden letztgenannten Voraussetzungen geht die in Gleichung (4) formulierte Proportionalität in die Herleitung ein; ein abstrakter Proportionalitätsfaktor $k$ tritt an die Stelle von $k_{cat}$ .

Weitere Darstellung für θ und für v. Die Sättigungsfunktion

In der Hill-Gleichung ist $\theta$ von $n$ und von $K_{D}$ abhängig, $K_{D}$ selbst aber auch von $n$ (siehe Gleichung (2')). Das Verhalten der Gleichung in Abhängigkeit von $n$ ist einheitlicher darstellbar (s. u. halblogarithmisch aufgetragene Graphen), wenn $K_{D}$ durch $K_{A}$ ersetzt wird:

\theta ={[S]^{n} \over K_{D}+[S]^{n}}={1 \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n}};\quad

(6)

Umformung
Einsetzen von (3'): $K{_{A}}^{n}=K_{\mathrm {D} }$ in die Hill-Gleichung ergibt: $\theta ={[S]^{n} \over [S]^{n}+K{_{A}}^{n}};\quad$ mit $\textstyle {1 \over [S]^{n}}$ erweitern und $\textstyle {[S]^{n} \over [S]^{n}}$ im Zähler und Nenner kürzen: $\theta ={1 \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n}};\quad$ (6)

Gleichsetzen der Gleichungen (4) und (6) ergibt eine Darstellung von $v$ , die $K_{D}$ ebenfalls nicht mehr enthält:

v={v_{\mathrm {max} } \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n}};\quad

(7)

Rechnung
Gleichsetzen der Gleichungen (4) und (6) ergibt: ${v \over v_{\mathrm {max} }}=\theta ={1 \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n}};\quad \mid \cdot v_{\mathrm {max} }$ $v={v_{\mathrm {max} } \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n}};\quad$ (7)

Wenn an ein Molekül Enzym $n$ Moleküle Substrat gebunden sind und die Konzentration der Enzym-Substrat-Komplexe $[ES_{n}]$ ist, so ist die Konzentration des gebundenen Substrats $n\cdot [ES_{n}]$ . Als Sättigungsfunktion $r$ wird das Verhältnis der Konzentration gebundenen Substrats zur Konzentration des insgesamt vorhandenen Enzyms bezeichnet:^[6]

r={n\cdot [ES_{n}] \over [E]_{t}}

Der Zusammenhang zur Hill-Gleichung ist wegen $\textstyle \theta ={[ES_{n}] \over [E]_{t}}$ gegeben mit

r=n\cdot \theta .\quad

(8)

Der empirische Hill-Koeffizienten n_H als Maß der Kooperativität von Enzymen

Gemäß Herleitung der Hill-Gleichung aus dem Massenwirkungsgesetz (s. o.) ist der Hill-Koeffizient $\textstyle n$ die Anzahl der Bindungsstellen eines Enzyms und daher eine natürliche Zahl. (Genau) für $\textstyle n=1$ sind die Konstanten $\textstyle K_{D}$ und $\textstyle K_{A}=K{_{D}}^{1 \over n}$ gleich. Auch sind genau für $n=1$ die Gleichungen (5) und (7) einer Michaelis-Menten-Gleichung äquivalent, indem die Konstante $\textstyle K_{D}=K_{A}$ als Michaelis-Menten-Konstante $\textstyle K_{M}$ aufgefasst wird.

Rechnung für Gleichung (7)
$v={v_{\mathrm {max} } \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n}};\quad$ (7) $n=1$ einsetzen und mit $[S]$ erweitern: $v={v_{\mathrm {max} }\cdot [S] \over [S]+{K_{A}\cdot [S] \over [S]}};$ mit $K_{A}=K_{M}$ : $v={v_{\mathrm {max} }\cdot [S] \over [S]+K_{M}};\quad$ Michaelis-Menten-Gleichung

Zu Unterscheidung von $n$ wird mit der Variable $n_{H}$ derjenige Hill-Koeffizient bezeichnet, für den die Hill-Gleichung die Kinetik eines solchen Enzyms empirisch am besten beschreibt. $n_{H}$ ist in der Regel kleiner als $n$ und keine natürliche Zahl. Die Theorie der Hill-Gleichung ist bei Verwendung von $n_{H}$ nur dann mathematisch konsistent, wenn $n$ in allen zur Beschreibung der Kinetik verwendeten Gleichungen durch $n_{H}$ ersetzt wird. $\quad \quad$ (9)

In Folgenden seien die Konstanten $K_{A}$ und $v_{\mathrm {max} }$ in allen zu vergleichenden Situationen der jeweils betrachteten Enzyme gleich. $\mathrm {-}$ Der Unterschied zwischen $n_{H}$ und $n$ wird dadurch erklärt, dass Enzyme mit mehreren Substratbindungsstellen aus mehreren Untereinheiten bestehen, die jeweils eine Bindungsstelle tragen und demzufolge für sich betrachtet mit $n_{H}=1$ und also einer Michaelis-Menten-Gleichung beschrieben werden können.

Ein als positive Kooperativität bezeichnetes Zusammenwirken der Untereinheiten kann aber auch bewirken, dass ein solches Enzym bei einer vorgegebenen Substratkonzentration $[S]$ schneller reagiert, als gemäß einer Michaelis-Menten-Gleichung (mit $K_{M}=K_{A}$ ) zu erwarten wäre. Eine Hill-Gleichung beschreibt für Konzentrationen $[S]>K_{A}$ genau dann positive Kooperativität, wenn $n_{H}>1$ ist. Weiter reagiert ein Enzym bei positiver Kooperativität bei einer vorgegebenen Substratkonzentrationen $[S]>K_{A}$ umso schneller, je größer $n_{H}$ ist. Logische Obergrenze für $n_{H}$ ist (die Anzahl der Bindungsstellen) $n$ .

Ganz entsprechend kann ein als negative Kooperativität bezeichnetes Zusammenwirken von Untereinheiten eines Enzyms bewirken, dass jenes bei einer vorgegebenen Substratkonzentration $[S]$ langsamer reagiert, als gemäß einer Michaelis-Menten-Gleichung (mit $K_{M}=K_{A}$ ) zu erwarten wäre. Eine Hill-Gleichung beschreibt für Konzentrationen $[S]>K_{A}$ genau dann negative Kooperativität, wenn $n_{H}<1$ ist, und bei einer vorgegebenen Substratkonzentrationen $[S]>K_{A}$ reagiert ein Enzym bei negativer Kooperativität umso langsamer, je kleiner $n_{H}$ ist.

Beweis
Die folgende Ungleichung (i) verwendet Gleichung (7) zur Berechnung der Geschwindigkeiten zweier Enzyme, deren Situationen sich ausschließlich im Hill-Koeffizienten $n_{H}$ bzw. $n{_{H}}'$ unterscheiden. Die folgenden Äquivalenzumformungen führen (i) auf die im Text genannten Bedingungen zurück. ${v_{\mathrm {max} } \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n_{H}}}>{v_{\mathrm {max} } \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n{_{H}}'}};\quad$ (i) der übersichtlicheren Schreibweise dient die Substitution $\textstyle q:={K_{A} \over [S]}$ . Nach (notwendiger) zusätzlicher Voraussetzung gilt $[S]>K_{A}\quad \mid :[S]>0\Rightarrow$ $1>{K_{A} \over [S]}=q>0,\quad$ (ii) denn für die Überlegung kann $K_{A},[S]>0$ vorausgesetzt werden. Einsetzen ergibt: ${v_{\mathrm {max} } \over 1+q^{n_{H}}}>{v_{\mathrm {max} } \over 1+q^{n{_{H}}'}};\quad \mid :v_{\mathrm {max} }>0$ ${1 \over 1+q^{n_{H}}}>{1 \over 1+q^{n{_{H}}'}};\quad \mid$ positive Brüche stürzen $1+q^{n_{H}}<1+q^{n{_{H}}'};\quad \quad \mid -1\quad \mid :q^{n{_{H}}'}>0$ $q^{n_{H}-n{_{H}}'}<1;\quad \quad \quad \quad \mid \log$ zu einer wählbaren Basis; mit der Rechenregel für den Logarithmus einer Potenz: $(n_{H}-n{_{H}}')\cdot \log {q}<0;\quad \mid :\log {q}<0$ wegen $0<q<1$ nach (ii) $n_{H}-n{_{H}}'>0\quad \Leftrightarrow \quad n_{H}>n{_{H}}'$ Für $n{_{H}}'=1$ ist die rechte Seite von (i) dem Funktionsterm eine Michaelis-Menten-Gleichung äquivalent (s. o. "Rechnung zu Gleichung (7)"). Daher zeigt Betrachtung von $n{_{H}}'=1$ , dass $n_{H}>1$ in einer Hill-Gleichung für $[S]>K_{A}$ positive Kooperativität beschreibt, wie behauptet. Betrachtung beliebiger Paare $n_{H}>n{_{H}}'>1$ zeigt, dass von zwei (vergleichbaren) Enzymen, die positive Kooperativität zeigen, dasjenige mit größerem Hill-Koeffizienten für $[S]>K_{A}$ schneller reagiert, wie behauptet. Für $n_{H}=1$ ist die linke Seite von (i) dem Funktionsterm eine Michaelis-Menten-Gleichung äquivalent (s. o. "Rechnung zu Gleichung (7)"). Daher zeigt Betrachtung von $n_{H}=1$ , dass $n{_{H}}'<1$ in einer Hill-Gleichung für $[S]>K_{A}$ negative Kooperativität beschreibt, wie behauptet. Betrachtung beliebiger Paare $1>n_{H}>n{_{H}}'$ zeigt, dass von zwei (vergleichbaren) Enzymen, die negative Kooperativität zeigen, dasjenige mit kleinerem Hill-Koeffizienten für $[S]>K_{A}$ langsamer reagiert, wie behauptet.

Ein Enzym mit mehreren Bindungsstellen, bei dem ein solches Zusammenwirken der Untereinheiten nicht zu beobachten ist, heißt nicht kooperativ.

Kooperativität ist nicht nur für Enzyme beschrieben, sondern auch für Nicht-Enzym-Proteine, an die mehrere andere Moleküle binden (s. o. Herleitung der Hill-Gleichung). Für die koordinative Bindung von Sauerstoff an Hämoglobin, das aus $n=4$ je ein Sauerstoffmolekül bindenden Untereinheiten besteht, wurde ein Hill-Koeffizient $n_{H}$ von 2,8 bestimmt.^[7]

Berechnung von n_H

Sind die Substratkonzentrationen $[S]=\mathrm {EC_{10}}$ bzw. $[S]=\mathrm {EC_{90}}$ bekannt, bei denen ein Enzym mit 10 % bzw. 90 % seiner Maximalgeschwindigkeit $v_{\mathrm {max} }$ reagiert, so lässt sich sein empirischer Hill-Koeffizient $n_{H}$ bestimmen:

n_{H}=\mathrm {\frac {\log(81)}{\log(EC_{90}/EC_{10})}}

Verallgemeinerung: Sind zwei beliebige verschiedene Substratkonzentrationen $EC_{P}$ bzw. $EC_{Q}$ bekannt, bei denen ein Enzym mit 0%< P% <100% bzw. 0%< Q% <100% seiner Maximalgeschwindigkeit $v_{\mathrm {max} }$ reagiert, so ist sein empirischer Hill-Koeffizient $n_{H}$ durch den folgenden Quotienten gegeben:

n_{H}={\bigg (}\log {\Big (}{100\cdot P-P\cdot Q \over 100\cdot Q-P\cdot Q}{\Big )}{\bigg )}:{\bigg (}\log {\Big (}{EC_{P} \over EC_{Q}}{\Big )}{\bigg )}

Herleitung
A. Mit Überlegung (9) ist bei Betrachtung des empirischen Hill-Koeffizienten $n$ in Gleichung (6) durch $n_{H}$ zu ersetzen. Die folgenden Umformungen lösen die entstehende Gleichung nach $[S]^{n_{H}}$ auf: $\theta ={1 \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n_{H}}};\quad \quad \mid$ Übergang zur reziproken Zahl $\quad \mid -1$ ${1 \over \theta }-1={1-\theta \over \theta }={{K_{A}}^{n_{H}} \over [S]^{n_{H}}};\quad \mid$ Brüche stürzen $\quad \mid \cdot {K_{A}}^{n_{H}}$ ${{K_{A}}^{n_{H}}\cdot \theta \over 1-\theta }=[S]^{n_{H}};\quad$ (i) B. Mit Gleichung (4): ${\frac {v}{v_{\mathrm {max} }}}=\theta ;$ ist $\theta$ außer durch die Hill-Gleichung auch durch den Anteil der gemessenen Reaktionsgeschwindigkeit $v$ an der Maximalgeschwindigkeit $v_{\mathrm {max} }$ gegeben; dieser Anteil kann als Prozentsatz oder als Dezimalzahl angegeben sein. - Einsetzen von $\theta =90\%=0{,}9$ für $[S]=\mathrm {EC_{90}}$ bzw. von $\theta =10\%=0{,}1$ für $[S]=\mathrm {EC_{10}}$ in (i) ergibt: ${{K_{A}}^{n_{H}}\cdot 0{,}9 \over 1-0{,}9}={K_{A}}^{n_{H}}\cdot 9=\mathrm {EC_{90}} ^{n_{H}}\quad$ (ii) ${{K_{A}}^{n_{H}}\cdot 0{,}1 \over 1-0{,}1}={{K_{A}}^{n_{H}}\cdot {1 \over 9}}=\mathrm {EC_{10}} ^{n_{H}}\quad$ (iii) C. (ii) und (iii) ergeben die Proportionalität: ${\Big (}{\mathrm {EC_{90}} \over \mathrm {EC_{10}} }{\Big )}^{n_{H}}={\mathrm {EC_{90}} ^{n_{H}} \over \mathrm {EC_{10}} ^{n_{H}}}={{K_{A}}^{n_{H}}\cdot 9 \over {{K_{A}}^{n_{H}}\cdot {1 \over 9}}}=81;$ Mit einem Logarithmus zu einer wählbaren Basis und der Rechenregel für den Logarithmus einer Potenz: $n_{H}\cdot \log {\Big (}{\mathrm {EC_{90}} \over \mathrm {EC_{10}} }{\Big )}=\log 81;\quad \mid :\log {\Big (}{\mathrm {EC_{90}} \over \mathrm {EC_{10}} }{\Big )}>0,\quad$ da $\mathrm {EC_{90}} >\mathrm {EC_{10}}$ $n_{H}={\log 81 \over \log {\Big (}{\mathrm {EC_{90}} \over \mathrm {EC_{10}} }{\Big )}},\quad$ wie angegeben. D. Verallgemeinerung: Für zwei beliebige verschiedene Anteile $0<p<1$ bzw. $0<q<1$ von $\theta$ und den zugehörigen Substratkonzentrationen $[S]=EC_{P=100p}$ bzw. $[S]=EC_{Q=100q}$ ergibt der gleiche Rechenweg: ${{K_{A}}^{n_{H}}\cdot p \over 1-p}={EC_{P}}^{n_{H}}\quad$ (ii') ${{K_{A}}^{n_{H}}\cdot q \over 1-q}={EC_{Q}}^{n_{H}}\quad$ (iii') $n_{H}\cdot \log {\Big (}{EC_{P} \over EC_{Q}}{\Big )}=\log {{{K_{A}}^{n_{H}}\cdot p \over 1-p} \over {{K_{A}}^{n_{H}}\cdot q \over 1-q}}=\log {\Big (}{p(1-q) \over (1-p)q}{\Big )}=\log {\Big (}{p-pq \over q-pq}{\Big )}=\log {\Big (}{100\cdot P-P\cdot Q \over 100\cdot Q-P\cdot Q}{\Big )},$ wobei der Bruch im letzten Schritt mit $100^{2}$ erweitert wurde; mit Division durch den (nach Konstruktion von null verschiedenen) Faktor $\textstyle \log {\Big (}{EC_{P} \over EC_{Q}}{\Big )}$ folgt die angegebene Formel.

Nicht linearisierte Graphen

Direkt-lineare Auftragung einer Enzymkinetik nach Michaelis-Menten

Enzymkinetische Parameter lassen sich bequem und präzise direkt aus einer Sättigungshyperbel gemäß der Abbildung herleiten („direkt-lineare Auftragung“ auch „Cornish-Bowden-Diagramm“ genannt). In dieser Hyperbel ist die enzymatische Umsatzgeschwindigkeit $v$ (Ordinate) als Funktion der Substratkonzentration $[S]$ (Abszisse) dargestellt.

Für die direkt-lineare Auftragung überträgt man die Anfangsgeschwindigkeiten des enzymatischen Umsatzes direkt in das $v$ - $[S]$ -Diagramm. Die $[S]$ -Werte sind vor Versuchsbeginn bekannt (eingestellte Substratkonzentrationen); während der Versuchsreihe ist dann der Ordinatenwert für $v$ (die Anfangsgeschwindigkeit) nachzutragen. Aus der maximalen Umsatzgeschwindigkeit $v_{\text{max}}$ lässt sich die halbe maximale Umsatzgeschwindigkeit ${\tfrac {1}{2}}v_{\text{max}}$ ableiten. Graphisch kann man daraus den Koordinatenwert für $K_{m}$ ermitteln. Die katalytische Effizienz folgt übrigens aus der Steigung der Tangente an den Ursprung: ${\tfrac {v_{\text{max}}}{K_{m}}}$ ; daraus ergibt sich ${\tfrac {k_{cat}}{K_{m}}}$ .

Berechnung der Steigung der Tangente an den Ursprung
Die Funktionsgleichung der Hyperbel ist die Michaelis-Menten-Gleichung $v([S])=\quad {\frac {v_{\mathrm {max} }[S]}{K_{\mathrm {m} }+[S]}};$ die Steigung $m_{t}$ der Tangente an den Ursprung kann als Grenzwert einer Sekantensteigung aufgefasst werden, die durch einen Differenzenquotienten gegeben ist. Das ergibt bei Näherung von rechts: $m_{t}=\lim _{h\rightarrow 0,\,h>0}{\frac {v(0+h)-v(0)}{h}}=\quad$ $\lim _{h\rightarrow 0,\,h>0}{v(h)-0 \over h}=\quad$ $\lim _{h\rightarrow 0,\,h>0}{\frac {v_{\mathrm {max} }h}{(K_{\mathrm {m} }+h)\cdot h}}=\quad$ ${\frac {v_{\mathrm {max} }}{K_{\mathrm {m} }}}.$ Bemerkung: Der Standard-Weg über die Ableitung der Funktion $v([S])$ nach Quotientenregel erfordert wegen der nur einseitige Differenzierbarkeit von $v([S])$ an der Stelle $[S]=0$ zusätzliche Überlegungen und ist zudem rechenaufwändiger.

Die Fehlerbehandlung wird im direkt-linearen Plot weitgehend vereinfacht: Mittelwertsbildung gibt dann die wahrscheinlichen Werte für die Parameter $K_{m}$ und $v_{\text{max}}$ . Bei Inspektion der Streubreite der Messpunkte (nicht identisch mit deren Standardabweichung) können Ausreißer leicht identifiziert und sogenannte Mediane abgelesen werden.

An dieser Stelle sei erwähnt, dass alle (auch die nachfolgenden) Auswertungsverfahren nicht nur für Enzyme, sondern auch für die Bindungsvorgänge von Carriern oder Rezeptoren Gültigkeit haben. Historisch gesehen wurden all diese Methoden (Hanes und Eadie-Hofstee-Auftragung für Enzyme, Scatchard und Hill-Auftragungen für Carrier) ursprünglich von Woolf entwickelt.

Direkt-linear aufgetragene Graphen einer Enzymkinetik nach Hill für unterschiedliche Werte von n_H

Die aus der Hill-Gleichung hergeleitete Gleichung (5) lässt sich als eine Funktion auffassen, die die empirisch gefundene Reaktionsgeschwindigkeit $v$ abhängig von der Substratkonzentration $[S]$ beschreibt. Nach Überlegung (9) ist bei der Formulierung der Funktion $n$ durch $n_{H}$ zu ersetzen:

f([S])=v={v_{\mathrm {max} }\cdot [S]^{n_{H}} \over K_{D}+[S]^{n_{H}}}.

f([S]) ist überall streng monoton steigend und nähert sich für zunehmende $[S]$ der waagerechten Asymptote $v=v_{\mathrm {max} }$ . Der Graph von f([S]) zeigt aber je nach Wert von $n_{H}$ unterschiedliches Verhalten:^[8]

Für $n_{H}=1$ ist er Teil einer Hyperbel, da Gleichung (5) genau dann einer Michaelis-Menten-Gleichung äquivalent ist (s. o.).
Für $n_{H}>1$ hat er genau einen Wendepunkt bei $\textstyle [S]_{w}={\Big (}K_{D}\cdot {n_{H}-1 \over n_{H}+1}{\Big )}^{1 \over n_{H}}=K_{A}\cdot {\Big (}{n_{H}-1 \over n_{H}+1}{\Big )}^{1 \over n_{H}}$ . Unter Mitberücksichtigung ihres Steigungsverhaltens ist $f([S])$ daher in diesem Fall eine Sigmoidfunktion. Der Fall $n_{H}>1$ lässt sich von den Fällen $n_{H}=1$ und $n_{H}<1$ durch bloße Betrachtung des Funktionsgraphen unterscheiden.
Für $n_{H}<1$ hat er keinen Wendepunkt und sieht einem Teil einer Hyperbel ähnlich. Ein solcher Graph heißt pseudohyperbol, weil sich der Fall $n_{H}<1$ vom Fall $n_{H}=1$ durch bloße Betrachtung des Graphen nicht unterscheiden lässt.

Rechnerische Nachweise
Vorüberlegungen: Für die vorgelegte Problemstellung kann $[S]\geq 0$ (als Definitionsbereich von $f([S])$ ) sowie $v_{\mathrm {max} },K_{D},n_{H}>0$ vorausgesetzt werden. (i) Für beliebige $0\neq a\in \mathbb {R}$ sind Potenzfunktionen $[S]\rightarrow [S]^{a}$ streng monoton, und ihre Werte durchlaufen für $[S]>0$ sämtliche positiven reellen Zahlen. (ii) Für beliebige $n_{H}\in \mathbb {R}$ sind für $K_{D},[S]>0$ die Potenzen $[S]^{n_{H}},[S]^{n_{H}-1},[S]^{n_{H}-2},(K_{D}+[S]^{n_{H}})^{2},(K_{D}+[S]^{n_{H}})^{3}>0$ . (iii) A. Für beliebige $n_{H}>0\Leftrightarrow -n_{H}<0$ ergibt die Konvergenz der Potenzfunktion: $\lim _{[S]\to \infty }{K_{D} \over [S]^{n_{H}}}=K_{D}\cdot \lim _{[S]\to \infty }[S]^{-n_{H}}=K_{D}\cdot 0=0;\quad$ hieraus folgt für den Funktionsterms von $\textstyle f([S])$ nach Erweitern um $\textstyle {1 \over [S]^{n_{H}}}$ : $\lim _{[S]\to \infty }{v_{\mathrm {max} }\cdot [S]^{n_{H}} \over K_{D}+[S]^{n_{H}}}=\lim _{[S]\to \infty }{v_{\mathrm {max} }\cdot {[S]^{n_{H}} \over [S]^{n_{H}}} \over {K_{D} \over [S]^{n_{H}}}+{[S]^{n_{H}} \over [S]^{n_{H}}}}={v_{\mathrm {max} }\cdot 1 \over 0+1}=v_{\mathrm {max} },\quad$ wie behauptet. B. Die Ableitung $f'([S])={v_{\mathrm {max} }\cdot K_{D}\cdot n_{H}\cdot [S]^{n_{H}-1} \over (K_{D}+[S]^{n_{H}})^{2}}$ ist mit (i) und (iii) überall positiv für $[S]>0$ , sodass $f([S])$ für alle $[S]>0$ streng monoton steigt. Zusätzliche Berücksichtigung von $f(0)=0$ und $f([S]>0)>0$ zeigt, dass $f([S])$ im gesamten Definitionsbereich streng monoton steigt, wie behauptet. C. Die Wendepunkte von $f([S])$ sind genau die Nullstellen mit Vorzeichenwechsel der zweiten Ableitung $f''([S])=v_{\mathrm {max} }\cdot K_{D}\cdot n_{H}\cdot [S]^{n_{H}-2}\cdot {K_{D}(n_{H}-1)-[S]^{n{_{H}}}(n_{H}+1) \over (K_{D}+[S]^{n_{H}})^{3}}=a([S])\cdot {b([S]) \over c([S])},\quad$ wobei für die Hilfsfunktionen $a([S]),b([S]),c([S])$ gilt: $a([S])=v_{\mathrm {max} }\cdot K_{D}\cdot n_{H}\cdot [S]^{n_{H}-2}>0\quad$ für $\quad [S]>0\quad$ nach (i) und (iii); $b([S])=K_{D}(n_{H}-1)-[S]^{n{_{H}}}(n_{H}+1)$ ; $c([S])=(K_{D}+[S]^{n_{H}})^{3}>0\quad$ für $\quad [S]>0\quad$ nach (iii). Da $f''([S])$ für $[S]<0$ nicht definiert ist, wechselt $f''([S])$ in $[S]=0$ nicht das Vorzeichen, und $f([S])$ hat bei $[S]=0$ keinen Wendepunkt. Außer $[S]>0$ gilt für alle Wendepunkte: $f''([S])=0\quad \Leftrightarrow \quad b([S])=0\quad \Leftrightarrow \quad [S]^{n_{H}}=K_{D}\cdot {n_{H}-1 \over n_{H}+1}=:D.\quad$ (iv) Mit (ii) hat Gleichung (iv) genau dann eine Lösung, wenn $D>0$ ist, und dann genau eine (d. h. ihre Lösung $[S]=[S]_{w}$ ist eindeutig, falls sie existiert). Mit $K_{D}>0$ ist $D<0$ für $n_{H}<1$ , sodass keine Lösung von (iv) existiert und $f([S])$ keinen Wendepunkt hat, wie behauptet. Mit $K_{D}>0$ ist $D>0$ für $n_{H}>1$ , sodass dann genau eine Lösung $[S]_{w}=D^{1 \over n_{H}}={\Big (}K_{D}\cdot {n_{H}-1 \over n_{H}+1}{\Big )}^{1 \over n_{H}}=K_{A}\cdot {\Big (}{n_{H}-1 \over n_{H}+1}{\Big )}^{1 \over n_{H}}$ von Gleichung (iv) existiert; $f([S])$ hat bei $[S]_{w}>0$ nach (ii) höchstens einen Wendepunkt. Zu zeigen bleibt, dass $f''([S])$ in $[S]=[S]_{w}$ das Vorzeichen wechselt. Da die Bestimmung der dritten Ableitung $f'''([S])$ recht aufwendig ist, wird hier das Verhalten von $f''([S])$ in einer Umgebung ihrer Nullstellen $[S]_{w}$ untersucht. Für beliebige $0<b,c\in \mathbb {R}$ sind Potenzfunktionen $b\rightarrow b^{c}$ streng monoton steigend. Also gilt für beliebige $\epsilon$ , für die $[S]_{w}>\epsilon >0$ ist: $([S]_{w}-\epsilon )^{n{_{H}}}<{[S]_{w}}^{n{_{H}}}\quad \mid \cdot (-(n_{H}+1))<0\quad$ (wegen $n_{H}>0>-1$ ) $-([S]_{w}-\epsilon )^{n{_{H}}}(n_{H}+1)>-{[S]_{w}}^{n{_{H}}}(n_{H}+1)\quad \mid +K_{D}(n_{H}-1)$ $b([S]_{w}-\epsilon )>b([S]_{w})=0\quad \mid \cdot a([S]_{w}-\epsilon )>0\quad \mid :c([S]_{w}-\epsilon )>0$ $f''([S]_{w}-\epsilon )>0$ . Für eine geeignete $\epsilon$ -Umgebung von $[S]_{w}$ ist also $f''([S])>0$ für alle $[S]\in U_{\epsilon }([S]_{w}),\quad [S]<[S]_{w}.\quad$ (v) Mit $[S]_{w}+\epsilon >0$ zeigen ausgehend von $([S]_{w}+\epsilon )^{n{_{H}}}>[S_{w}]^{n{_{H}}}$ die entsprechenden Umformungen, dass $f''([S])<0$ für alle $[S]\in U_{\epsilon }([S]_{w}),\quad S>[S]_{w}\quad$ ist. Letzteres zeigt zusammen mit (v) den Vorzeichenwechsel von $f''([S])$ in $[S]=[S]_{w}$ .

Halblogarithmisch aufgetragene Graphen einer Hill-Gleichung für unterschiedliche Werte von n_H

Im nebenstehenden Diagramm^[9] ist die Ordinate der Anteil $\theta$ substratgebundenen Enzyms an insgesamt vorhandenem. Die Abszisse gibt das Verhältnis $\textstyle {[S] \over K_{A}}$ an; sie ist logarithmisch geteilt. Bei Verwendung des dekadischen Logarithmus ist

wegen $\lg(1)=0$ der Punkt „1“ Nullpunkt der Abszisse und
wegen $\lg(1)=0$ und $\lg(10)=1$ der Abstand zwischen den Punkten „1“ und „10“ Längeneinheit der Abszisse.

Für beliebiges $x\in \mathbb {R}$ bezeichnet ein $x$ Längeneinheiten vom Nullpunkt entfernter Punkt der Abszisse die Substratkonzentration $[S]=10^{x}\cdot K_{A}$ , wobei der Faktor $10^{x}$ auf der Abszisse ablesbar ist. Jeder Graph des Diagramms zeigt eine Hill-Gleichung der Form (6):

\theta ={1 \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n_{H}}}

.

Erläuterung
Jeder Graph des Diagramms zeigt eine Funktion $\theta ={1 \over 1+(10^{-x})^{n_{H}}}$ , wie durch Betrachtung des Verhaltens dieser Funktion für $x=0$ (am Nullpunkt "1" der Abszisse) und für $x\rightarrow \pm \infty$ anschaulich wird. Einsetzen von $(\quad [S]=10^{x}\cdot K_{A}\Leftrightarrow \quad {[S] \over K_{A}}=10^{x}\Leftrightarrow \quad )\quad {K_{A} \over [S]}=10^{-x}$ zeigt, dass jeder Graph auch eine Hill-Gleichung der Form (6) darstellt: $\theta ={1 \over 1+(10^{-x})^{n_{H}}}={1 \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n_{H}}}$ .

Für je einen vorgegebene Hill-Koeffizienten $n_{H}$ ist im Diagramm der Graph der Hill-Gleichungen zu allen Werten von $K_{A}$ gleich, da $\textstyle \theta$ nicht direkt von $\textstyle K_{A}$ abhängt, sondern vom Verhältnis $\textstyle {K_{A} \over [S]}(=10^{-x})$ . Die Gesamtheit der Graphen bildet für beliebige positive $\textstyle n_{H}$ eine (einparametrige) Schar direkt vergleichbarer Kurven; Teile einer Hyperbel oder pseudohyperbole Kurvenverläufe treten nicht auf.

Jeder Graph des Diagramms ist auch Graph einer logistischen Funktion $f_{n_{H}}\colon x\rightarrow f(x)=\theta$ und hat daher

für $x\rightarrow \infty \quad (\Leftrightarrow [S]\rightarrow \infty )\quad$ die Asymptote $\theta =1$ sowie
für $x\rightarrow -\infty \quad (\Leftrightarrow [S]\rightarrow 0)\quad$ die Asymptote $\theta =0$ ;
jeder Graph ist punktsymmetrisch mit Symmetriezentrum $\textstyle W(1\mid {\frac {1}{2}})$ ;
$W$ ist der Wendepunkt jeder Funktion $f_{n_{H}}$ ;
die Steigung von $f_{n_{H}}$ in $W$ ist $\textstyle {n_{H}\cdot \ln(10) \over 4}\approx 0{,}5756\cdot n_{H}$ . In diesem Sinne nimmt die Steilheit des Graphen mit $n_{H}$ zu.

Beweis
Die allgemeine logistische Funktion $f_{G,c,k}:x\rightarrow f(x)=\theta$ kann geschrieben werden: $\theta ={G \over 1+e^{c}\cdot e^{-kGx}}$ ; mit $\quad G=1,\quad c=0,\quad k=n_{H}\cdot \ln(10),\quad [S]=10^{x}\cdot K_{A}\Leftrightarrow \quad {K_{A} \over [S]}=10^{-x}\quad$ hat $f_{n_{H}}$ die Form: $\theta ={1 \over 1+e^{0}\cdot e^{-\ln(10)\cdot n_{H}\cdot 1\cdot x}}=\quad {1 \over 1+1\cdot 10^{-n_{H}\cdot x}}=\quad {1 \over 1+(10^{-x})^{n_{H}}}\quad ={1 \over 1+({K_{A} \over [S]})^{n_{H}}}\quad$ (6), q. e. d. Die Eigenschaften der allgemeinen logistischen Funktion setzen sich auf $f_{n_{H}}$ wie folgt fort: Für $x\rightarrow \infty \quad (\Leftrightarrow 10^{x}\cdot K_{A}=[S]\rightarrow \infty )$ ist $\theta =G=1$ Asymptote, q. e. d., für $x\rightarrow -\infty \quad (\Leftrightarrow 10^{x}\cdot K_{A}=[S]\rightarrow 0)$ ist $\theta =0$ Asymptote, q. e. d.; jeder Graph ist punktsymmetrisch mit Symmetriezentrum $\textstyle W(x_{w}\mid {\frac {G}{2}})=W(x_{w}\mid {\frac {1}{2}})$ ; mit $\textstyle x_{w}={c \over k\cdot G}$ und $\textstyle c=0$ ist $\textstyle x_{w}=0\quad (\Leftrightarrow 10^{x_{w}}=1)$ , q. e. d.; $W$ ist Wendepunkt von $f_{n_{H}}$ , q. e. d.; die Steigung von $f_{n_{H}}$ in $W$ ist $\textstyle {\frac {k\cdot G^{2}}{4}}={\frac {k}{4}}={\frac {n_{H}\cdot \ln(10)}{4}}$ , q. e. d.

Weiter gehört jede logistische Funktion zu den Sigmoidfunktionen, d. h. jeder ihrer Graphen verläuft S-förmig.

Linearisierungsverfahren

Linearisierungsverfahren wurden in der Vergangenheit sehr häufig für die schnelle grafische Bestimmung der wichtigen Kinetikparameter $K_{m}$ und $v_{\text{max}}$ verwendet. Sie sind zwar einprägsam und verbreitet, führen jedoch zu einer teils erheblichen Verfälschung des Ergebnisses durch Messfehler und sind zur Fehlerbetrachtung mehr oder weniger ungeeignet. Mittlerweile hat die Ermittlung der Michaelis-Menten-Parameter durch nichtlineare Regression stark an Bedeutung gewonnen, die zu deutlich genaueren Ergebnissen führt. Deshalb sollen die Linearisierungsverfahren hier nur gestreift werden.

Lineweaver-Burk-Diagramm

Hans Lineweaver (1907–2009) und Dean Burk (1904–1988) haben 1934 eine doppelt-reziproke Darstellung vorgestellt, bei der ${\tfrac {1}{v}}$ als Funktion von ${\tfrac {1}{[S]}}$ aufgetragen wird.^[10]

Eine Umformung der Michaelis-Menten-Gleichung ergibt die folgende Gleichung:

{1 \over v}={K_{m} \over v_{\text{max}}}{1 \over [S]}+{1 \over v_{\text{max}}}

Umformung
$v=\quad {\frac {v_{\mathrm {max} }[S]}{K_{\mathrm {m} }+[S]}};\quad$ (Michaelis-Menten) $\quad \mid$ Übergang zur reziproken Zahl ${\frac {1}{v}}=\quad {\frac {K_{\mathrm {m} }+[S]}{v_{\mathrm {max} }[S]}}=\quad {\frac {K_{\mathrm {m} }}{v_{\mathrm {max} }[S]}}+{\frac {[S]}{v_{\mathrm {max} }[S]}};$ ${1 \over v}={K_{m} \over v_{\text{max}}}{1 \over [S]}+{1 \over v_{\text{max}}};\quad$ (Lineweaver-Burk)

Die Steigung dieser linearen Funktion beträgt $\textstyle {K_{m} \over v_{\text{max}}}$ ; sie schneidet

die $\textstyle {\frac {1}{v}}$ -Achse bei $\textstyle {\frac {1}{v}}={1 \over v_{\text{max}}}$ (Ordinatenabschnitt) und
die $\textstyle {1 \over [S]}$ -Achse bei $\textstyle {1 \over [S]}=-{\tfrac {1}{K_{m}}}$ (Abszissenabschnitt).

Rechnung zu Achsenabschnitten und Steigung
Indem $\textstyle {1 \over [S]}$ als Argument einer Funktion aufgefasst wird, beschreibt die Gleichung ${1 \over v}={K_{m} \over v_{\text{max}}}{1 \over [S]}+{1 \over v_{\text{max}}}$ eine lineare Funktion. Für diese lassen sich Steigung $\textstyle {K_{m} \over v_{\text{max}}}$ und Ordinatenabschnitt $\textstyle {1 \over v_{\text{max}}}$ direkt aus der Funktionsgleichung ablesen. Sei $Q$ der Koordinatenursprung, $R$ der Schnittpunkt des Graphen der Gleichung mit der $\textstyle {1 \over [v]}$ -Achse, sodass $QR$ der Ordinatenabschnitt der Funktion ist, und $P$ der Schnittpunkt des Graphen der Gleichung mit der $\textstyle {\frac {1}{[S]}}$ -Achse, sodass $PQ$ der Abszissenabschnitt der Funktion ist. Die $\textstyle {\frac {1}{[S]}}$ -Koordinate von $P$ sei $-p$ . Dann ist das Dreieck $QRP$ einem Steigungsdreieck ähnlich. Also gilt für das Verhältnis der Streckenlängen von Ordinaten- und Abszissenabschnitt: $\|QR\|:\|PQ\|=\quad {1 \over v_{\text{max}}}:p=\quad {K_{m} \over v_{\text{max}}};\quad \mid \cdot v_{\text{max}}$ ${1 \over p}=K_{\mathrm {m} };\quad \mid$ Übergang zur reziproken Zahl $\quad \mid \cdot (-1)$ $-p=-{\frac {1}{K_{\mathrm {m} }}}$ , wie in der Zeichnung angegeben.

Obwohl sie zur Datenrepräsentation meist verwendet wird, ist diese Methode zur Auswertung jedoch unverlässlich. Kleine Fehler in $v$ ergeben bei kleinen $[S]$ -Werten eine große Abweichung in ${\tfrac {1}{v}}$ , bei großen $[S]$ -Werten ist diese eher zu vernachlässigen. Die Autoren der Methode haben die Unsicherheit großer ${\tfrac {1}{v}}$ Werte betont und darauf hingewiesen, dass diese grundsätzlich geringer zu gewichten sind. Spätere Anwender haben dies zumeist ignoriert. Wo immer möglich sollte dieses durch Computerverfahren zur Bestimmung enzymkinetischer Parameter ersetzt werden.

Eadie-Hofstee-Diagramm

Das Eadie-Hofstee-Diagramm, auch Woolf–Eadie–Augustinsson–Hofstee- oder Eadie–Augustinsson-Diagramm, nimmt eine Mittelstellung ein. Hierbei wird $v$ als Funktion von ${\tfrac {v}{[S]}}$ aufgefasst. Die zugehörige Umformung der Michaelis-Menten-Gleichung ergibt:

v=-K_{m}{v \over [S]}+v_{\text{max}}

Umformung
$v=\quad {\frac {v_{\mathrm {max} }[S]}{K_{\mathrm {m} }+[S]}};\quad$ (Michaelis-Menten) $v=\quad v_{\mathrm {max} }\cdot {\frac {[S]}{K_{\mathrm {m} }+[S]}};\quad \mid \cdot {\frac {K_{\mathrm {m} }+[S]}{[S]}}$ $v\cdot {\frac {K_{\mathrm {m} }+[S]}{[S]}}=v_{\mathrm {max} }$ Umformung der linken Seite: $\quad v\cdot {\frac {K_{\mathrm {m} }+[S]}{[S]}}=\quad v\cdot ({\frac {K_{\mathrm {m} }}{[S]}}+1)=\quad v\cdot {\frac {K_{\mathrm {m} }}{[S]}}+v;\quad$ einsetzen: $v\cdot {\frac {K_{\mathrm {m} }}{[S]}}+v=v_{\mathrm {max} }\quad \mid -{\frac {v\cdot K_{\mathrm {m} }}{[S]}}$ $v=-K_{\mathrm {m} }\cdot {\frac {v}{[S]}}+v_{\mathrm {max} };\quad$ (Eadie-Hofstee)

Aus dem Diagramm lässt sich auf der $v$ -Achse als Ordinatenabschnitt $v_{\text{max}}$ ablesen, aus der (negativen) Steigung $-K_{m}$ der Regressionsgeraden $K_{m}$ bestimmen.

Der Fehler wächst mit v/[S]. Da v bei beiden Koordinaten eingeht, konvergieren alle Abweichungen zum Ursprung.

Scatchard-Diagramm

Das Scatchard-Diagramm fasst umgekehrt $v/[S]$ als Funktion von $v$ auf. Es entsteht aus dem Eadie-Hofstee-Diagramm durch Vertauschung der Achsen (oder äquivalent: durch Spiegelung des Diagramms insgesamt an der 1. Winkelhalbierenden des Koordinatensystems). Die entsprechende Umformung der zum Eadie-Hofstee-Diagramm gehörigen Gleichung ergibt:

${\frac {v}{[S]}}=-{\frac {1}{K_{m}}}\cdot v+{\frac {v_{\text{max}}}{K_{m}}}$

Umformung
$v=-K_{m}{v \over [S]}+$ $v_{\text{max}};\quad$ (Eadie-Hofstee) $\quad \mid -v_{\text{max}}$ $v-v_{\text{max}}=$ $-K_{m}{v \over [S]};\quad \mid :(-K_{m})\neq 0$ ${v-v_{\text{max}} \over -K_{m}}=\quad {v_{\text{max}}-v \over K_{m}}=\quad {v \over [S]};$ ${v \over [S]}=-{v \over K_{m}}+{v_{\text{max}} \over K_{m}}=\quad -{1 \over K_{m}}\cdot v+{v_{\text{max}} \over K_{m}}.\quad$ (Scatchard)

Aus dem Diagramm lässt sich ebenfalls auf der $v$ -Achse, die nun Abszisse ist, $v_{\text{max}}$ als Abszissenabschnitt ablesen, denn ein Ordinatenabschnitt des Eadie-Hofstee-Diagramms geht durch die genannte Spiegelung in einen Abszissenabschnitt des Scatchard-Diagramms über. Ebenso lässt sich aus der (negativen) Steigung $\textstyle -{1 \over K_{m}}$ der Regressionsgeraden durch Übergang zur reziproken Zahl und Vorzeichenwechsel $K_{m}$ bestimmen. Der Ordinatenabschnitt der Gerade im Scatchard-Diagramm ist der im Abschnitt "Direkt-lineare Auftragung" als Maß der katalytischen Effizienz genannte Bruch.

Das Scatchard-Diagramm wird zumeist zur Repräsentation von Bindungsmessungen (anstelle enzymkinetischer Daten) angewendet. Scatchard- und Eadie-Hofstee-Diagramme gelten als die besten Werkzeuge zur Diagnose kooperativer Phänomene. Im Falle negativer Kooperativität oder nicht-identischer, isolierter Bindungsplätze entsteht ein konkaver Verlauf mit linearem Endast. Die Steigungen entsprechen hier den Affinitäten (K_d beziehungsweise $K_{m}$ ) und die Gesamtzahl der Bindungsplätze (aktiven Zentren) ist aus dem Schnittpunkt mit der $v$ -Achse abzulesen.

Hanes-Woolf-Diagramm (Hanes(-Wilkinson)-Diagramm)

Das Hanes-Woolf-Diagramm^[11] ist die bestmögliche lineare Auftragungsmöglichkeit. Es geht auf Charles Samuel Hanes (1903–1990) und Barnet Woolf (1902–1983) zurück. Hierbei wird eine Umformung der Michaelis-Menten-Gleichung verwendet, die [S]/v als Funktion von [S] darstellt:

{[S] \over v}={1 \over v_{\text{max}}}[S]+{K_{m} \over v_{\text{max}}}

Umformung
$v=\quad {\frac {v_{\mathrm {max} }[S]}{K_{\mathrm {m} }+[S]}};$ $\quad$ (Michaelis-Menten) $\quad \mid :[S]\neq 0$ $\quad \mid$ Brüche stürzen ${\frac {[S]}{v}}=\quad {\frac {K_{\mathrm {m} }+[S]}{v_{\mathrm {max} }}}=\quad {\frac {[S]}{v_{\mathrm {max} }}}+{\frac {K_{\mathrm {m} }}{v_{\mathrm {max} }}};$ ${\frac {[S]}{v}}=\quad {\frac {1}{v_{\text{max}}}}\cdot [S]+{\frac {K_{\mathrm {m} }}{v_{\text{max}}}};\quad$ (Hanes-Woolf)

Die Steigung dieser linearen Funktion beträgt $\textstyle {\frac {1}{v_{\mathrm {max} }}}$ ; sie schneidet

die $\textstyle {\frac {[S]}{v}}$ -Achse bei $\textstyle {\frac {[S]}{v}}={\frac {K_{\mathrm {m} }}{v_{\mathrm {max} }}}$ (Ordinatenabschnitt) und
die $\textstyle [S]$ -Achse bei $\textstyle [S]=-K_{\mathrm {m} }$ (Abszissenabschnitt).

Rechnung zu Achsenabschnitten und Steigung
Für die lineare Funktion mit der Gleichung ${\frac {[S]}{v}}=\quad {\frac {1}{v_{\mathrm {max} }}}\cdot [S]+{\frac {K_{\mathrm {m} }}{v_{\mathrm {max} }}};\quad$ lassen sich Steigung $\textstyle {\frac {1}{v_{\mathrm {max} }}}$ und Ordinatenabschnitt $\textstyle {\frac {K_{\mathrm {m} }}{v_{\mathrm {max} }}}$ direkt aus der Funktionsgleichung ablesen. Sei $Q$ der Koordinatenursprung. $R$ der Schnittpunkt des Graphen der Gleichung mit der $\textstyle {[S] \over v}$ -Achse, sodass $QR$ der Ordinatenabschnitt der Funktion ist, und $P$ der Schnittpunkt des Graphen der Gleichung mit der $\textstyle [S]$ -Achse, sodass $PQ$ der Abszissenabschnitt der Funktion ist. Die $\textstyle [S]$ -Koordinate von $P$ sei $-p$ . Dann ist das Dreieck $QRP$ einem Steigungsdreieck ähnlich. Also gilt für das Verhältnis der Streckenlängen von Ordinaten- und Abszissenabschnitt: $\|QR\|:\|PQ\|=\quad {\frac {K_{\mathrm {m} }}{v_{\mathrm {max} }}}:p=\quad {\frac {1}{v_{\mathrm {max} }}};\quad \mid \cdot v_{\mathrm {max} }$ ${K_{\mathrm {m} } \over p}=\quad 1;\quad \mid \cdot (-p)$ $-K_{\mathrm {m} }=\quad -p,\quad$ wie in der Zeichnung angegeben.

Fehler in [S]/v sind eine weit bessere Annäherung der Fehler in v. Aufgrund einer unverfälschten Spreizung der Messpunkte entlang der [S]-Achse wird das Ergebnis durch einzelne Ausreißer prinzipiell weniger verfälscht. Da aber abhängige und unabhängige Variable vermischt werden, ist auch hier eine Datenoptimierung durch lineare Regression nicht sinnvoll.

Hill-Diagramm

Das Hill-Diagramm ist eine Darstellung der Hill-Gleichung, in der $\textstyle \log {\theta \over 1-\theta }$ (Ordinatenwert) als Funktion von $\log {[S]}$ (Abszissenwert) aufgetragen wird. Die zugehörige Umformung der Hill-Gleichung ergibt:

\log \left({\dfrac {\theta }{1-\theta }}\right)=n_{H}\log {[S]}-\log {K_{D}};\quad

(10)

Umformung
Die Hill-Gleichung wird nach Ersetzen vom $n$ durch $n_{H}$ gemäß Überlegung (9) zu: $\theta ={\frac {[S]^{n_{H}}}{K_{D}+[S]^{n_{H}}}};\quad \mid$ Übergang zur reziproken Zahl ${\frac {1}{\theta }}={\frac {K_{D}+[S]^{n_{H}}}{[S]^{n_{H}}}}={\frac {K_{D}}{[S]^{n_{H}}}}+1;\quad \mid -1$ ${\frac {1}{\theta }}-1={\frac {1-\theta }{\theta }}={\frac {K_{D}}{[S]^{n_{H}}}};\quad \mid$ Brüche stürzen ${\frac {\theta }{1-\theta }}={\frac {[S]^{n_{H}}}{K_{D}}};\quad \mid \log$ zu einer wählbaren Basis; mit der Rechenregel für den Logarithmus eines Quotienten bzw. den Logarithmus einer Potenz: $\log \left({\frac {\theta }{1-\theta }}\right)=\quad \log \left({\frac {[S]^{n_{H}}}{K_{D}}}\right)=\quad \log \left([S]^{n_{H}}\right)-\log K_{D}=\quad n_{H}\cdot \log[S]-\log K_{D};\quad$ (10)

Bei Verwendung von $K_{A}$ hat (10) die Form:

\log \left({\dfrac {\theta }{1-\theta }}\right)=n_{H}\log {[S]}-n_{H}\log {K_{A}};\quad

(10a)

Umformung
Die Definition der Halbsättigungskontante $K_{A}$ in Gleichung (3') wird nach Ersetzen vom $n$ durch $n_{H}$ gemäß Überlegung (9) zu: $K{_{A}}^{n_{H}}=K_{D}\quad \mid \log$ zur gleichen Basis wie $\log {[S]}$ mit der Rechenregel für den Logarithmus einer Potenz: $n_{H}\log {K_{A}}=\log {K_{D}};$ dies kann in (10) eingesetzt werden.

Auch in den hier folgenden Gleichungen kann $n_{H}\log {K_{A}}$ an die Stelle von $\log {K_{D}}$ treten.

Ist $v_{\mathrm {max} }$ bekannt, so lassen sich die Ordinatenwerte unter Verwendung von $v$ bestimmen:

\log \left({\dfrac {v}{v_{\mathrm {max} }-v}}\right)=n_{H}\log {[S]}-\log {K_{D}};\quad

(10b)

Umformung
Die Gleichungen (10) und (10b) sind äquivalent, wenn das Argument des Logarithmus der linken Seite für beide Gleichungen übereinstimmt. Einsetzen von Gleichung (4) und Erweitern mit $v_{\mathrm {max} }$ ergibt: ${\theta \over 1-\theta }={{v \over v_{\mathrm {max} }} \over 1-{v \over v_{\mathrm {max} }}}={v \over v_{\mathrm {max} }-v}$

Die Sättigungsfunktion $r$ kann in die Gleichung eingeführt werden:

\log \left({\dfrac {r}{n_{H}-r}}\right)=n_{H}\log {[S]}-\log {K_{D}};\quad

(10c)

Umformung
Die Definition der Sättigungsfunktion $r$ nach Gleichung (6) wird nach Ersetzen vom $n$ durch $n_{H}$ gemäß Überlegung (9) zu: $r=n_{H}\cdot \theta ;\quad$ (i) die Gleichungen (10) und (10c) sind äquivalent, wenn das Argument des Logarithmus der linken Seite für beide Gleichungen übereinstimmt. Erweitern mit $n_{H}$ und Einsetzen von (i) ergibt: ${\frac {\theta }{1-\theta }}={n_{H}\cdot \theta \over n_{H}-n_{H}\cdot \theta }={\frac {r}{n_{H}-r}}$

Insoweit die Hill-Gleichung eine Enzymkinetik zutreffend beschreibt, zeigt das Hill-Diagramm eine Gerade $g$ , aus der sich

$n_{H}$ als deren Steigung und
$\log {K_{A}}$ als Abszissenabschnitt (= Abszissenwert des Schnitts von $g$ mit der Abszisse)

ablesen lässt; hieraus lässt sich nach Delogarithmieren $K_{A}$ und nach Berechnung von $\log {K_{D}}=n_{H}\log {K_{A}}$ und anschließendem Delogarithmieren auch $K_{D}$ bestimmen.

Begründung und Rechenhinweise
A. Diejenigen Varianten der Gleichung (10), die den Summanden $-\log K_{D}$ enthalten, haben die Form Ordinatenwert = $n_{H}\cdot$ Abszissenwert + Ordinatenabschnitt und sind daher als Funktionsvorschrift einer linearen Funktion mit Steigung $n_{H}$ deutbar, deren Graph die angegebene Gerade $g$ ist. B. Zur Bestimmung des Abszissenabschnitts $\log {[S]}=(\log[S])_{0}$ einer solchen linearen Funktion ist ihr Ordinatenwert null zu setzen: $0=\quad n_{H}\cdot (\log[S])_{0}-\log {K_{D}}=\quad n_{H}\cdot (\log[S])_{0}-n_{H}\cdot \log {K_{A}};\quad \mid -n_{H}\cdot (\log[S])_{0}\quad \mid :(-n_{H})\neq 0$ $(\log[S])_{0}=\log {K_{A}},$ wie im Text angegeben. Bemerkung: Diejenigen Varianten der Gleichung (10), die den Summanden $-n_{H}\log {K_{A}}$ enthalten, sind Geradengleichungen der Form: Ordinatenwert = $n_{H}\cdot$ Abszissenwert - $n_{H}\cdot$ Abszissenabschnitt = $n_{H}\cdot$ (Abszissenwert - Abszissenabschnitt) C. Ist $b$ die Basis des gewählten Logarithmus, sodass $\log {_{b}}{K_{A}}$ als Abszissenabschnitt aus dem Hill-Diagramm ablesbar ist, so ist die Formel zum Delogarithmieren $K_{A}=b^{\log {_{b}}{K_{A}}}$ . Entsprechend zum Delogarithmieren von $\log {_{b}}{K_{D}}$ . Aus mathematischer Sicht könnte zur hier beschriebenen Rechnung eine beliebige Basis verwendet werden, üblich sind jedoch vor allem die Basis 10 des dekadischen Logarithmus', der meist mit $\lg$ bezeichnet wird, also $K_{A}=10^{\lg {K_{A}}}$ und die Basis e des natürlichen Logarithmus', der meist mit $\ln$ bezeichnet wird, also $K_{A}=e^{\ln {K_{A}}}$ ; jeweils entsprechend zum Delogarithmieren von $\lg {K_{D}}$ bzw. $\ln {K_{D}}$ . Im angelsächsischen Sprachraum wird nicht nur der allgemeine, sondern auch der natürliche Logarithmus zuweilen mit $\log$ bezeichnet (was zu Verwechselungen führen kann).

Im nebenstehenden Hill-Diagrammen^[12] ist die Abszissenvariable $\textstyle \log {[S]}$ mit $\textstyle \log {[X]}$ bezeichnet, der Abszissenabschnitt $\textstyle \log {K_{A}}$ mit $\textstyle \log {K_{d}}$ , die Ordinatenvariable $\textstyle {\log {\theta \over 1-\theta }}$ mit $\textstyle {\log {Y \over 1-Y}}$ . (Die Längeneinheit ist für beide Achsen unterschiedlich gewählt, sodass die Steigung der roten Gerade nicht $\approx 1$ ist. Der Schnitt einer Gerade mit der eingezeichneten Ordinate, die nicht durch den Nullpunkt der Abszisse führt, ist nicht der Ordinatenabschnitt der jeweiligen Gerade.)

Für den gleichen Abszissenabschnitt $\textstyle \log {K_{A}}=-6$ (und damit den für beide Geraden gleichen Wert von $K_{A}$ ) ist

die rote Gerade das Hill-Diagramm eines hochkooperativen Enzyms (Schnitt mit der Ordinate bei $\textstyle \approx -12\Rightarrow$ Geradensteigung $\quad \textstyle n_{H}\approx {0-(-12) \over (-6)-(-9)}=4$ );
die grüne Gerade dasjenige eines kaum oder nicht kooperativen Enzyms (Schnitt mit der Ordinate bei $\textstyle \approx -3\Rightarrow$ Geradensteigung $\quad \textstyle n_{H}\approx {0-(-3) \over (-6)-(-9)}=1$ ).

Wenn die berechneten Wertepaare nicht auf einer Gerade liegen, kann diese außer durch zufällige auch durch systematische Fehler bedingt sein, denn die Hill-Gleichung setzt voraus, dass der Hill-Koeffizient für alle Konzentrationen gleich ist. Eine Abweichung hiervon fand G.S. Adair, der ebenfalls die Sauerstoffbindung von Hämoglobin untersuchte.^[13]

Zusammenstellung von Linearisierungen einer Hyperbel

$\quad$

Inhibitoren

Hauptartikel: Enzymhemmung

Viele Therapeutika und Gifte sind Hemmstoffe (Inhibitoren) von Enzymen. Aus diesem Grunde ist der Aufklärung des Wirkungsmechanismus immer eine besondere Bedeutung zugekommen. Die Nomenklatur der Hemmtypen wurde von William Wallace Cleland (* 1930) 1963 auf eine systematische Grundlage gestellt, leider werden in vielen Lehrbüchern immer noch Begriffe abweichend verwendet.

Hier sollte allerdings beachtet werden, dass sich klassische Analysen auf reversibel bindende Stoffe beschränken. Irreversible Bindung einer Substanz an ein Enzym führt zur Inaktivierung, nicht zur Hemmung.

Abgeleitet aus der Michaelis-Menten-Gleichung $v=V_{\text{max}}\cdot [\mathrm {S} ]/(K_{m}+[{\textrm {S}}])$ stellt sich die allgemeine Inhibitionsgleichung wie folgt dar:

v={\frac {V_{\text{max}}\cdot [\mathrm {S} ]}{K_{m}(1+{\frac {[\mathrm {I} ]}{K_{i}}})+[\mathrm {S} ](1+{\frac {[\mathrm {I} ]}{K_{ii}}})}}

Danach kann das Verhältnis des $Ki$ -Wertes (Dissoziationskonstante des Komplexes EI) und des $K{ii}$ -Wertes (Dissoziationskonstante des Komplexes EIS) zur Ableitung des Inhibitionstyps dienen:

Kompetitiv

Inhibitor und Substrat schließen sich gegenseitig von der Bindung an das Enzym aus. Dies bedeutet jedoch nicht notwendigerweise, dass der Inhibitor an der gleichen Bindungsstelle bindet wie das Substrat. Auch wenn die Bindung von Substrat bzw. Inhibitor zu Konformationsänderung im Enzym führen, welche die Bindungsstelle für den jeweils anderen blockieren, ist die Hemmung kompetitiv. Wenn Substrat und Inhibitor allerdings die gleiche Bindungsstelle haben, dann ist der Hemmtyp notwendig kompetitiv.

Bei der Kompetitiven Hemmung kann der Inhibitor durch Substrat aus dem Enzym verdrängt werden, $V_{\text{max}}$ ändert sich also nicht. Allerdings wird für jede gewünschte Geschwindigkeit eine höhere $[\mathrm {S} ]$ benötigt, die scheinbare $K_{m}$ wird also mit steigender $[\mathrm {I} ]$ höher. Im Lineweaver-Burk-Diagramm führt dies bei unterschiedlichen $[\mathrm {I} ]$ beziehungsweise $K_{I}$ zu einer Schar von Geraden, die einen gemeinsamen Schnittpunkt auf der y-Achse bei ( $1/V_{\text{max}}$ ) haben.

Unkompetitiv

Der Inhibitor bindet nicht an das freie Enzym, sondern an den ES-Komplex. Höhere Konzentrationen des Substrates können daher den Hemmstoff nicht vom Enzym verdrängen, sondern führen zu vermehrter Bindung. Umgekehrt vermindert Bindung des Hemmstoffes die Konzentration von ES, nach dem Prinzip von Le Chatelier muss sich also zusätzliches ES aus E und S bilden: Die scheinbare $K_{m}$ vermindert sich, die Affinität des Enzymes für das Substrat steigt mit steigender $[\mathrm {I} ]$ . Gleichzeitig nimmt natürlich $V_{\text{max}}$ ab. Im Lineweaver-Burk-Diagramm finden wir eine Schar paralleler Geraden.

Nicht-kompetitiv

Der Inhibitor kann sowohl an E als auch an ES binden. Im einfachsten Fall ist dabei $K_{i}=K_{ii}$ , d. h., dass die Substratbindung die Affinität des Enzymes für den Inhibitor nicht verändert, etwa durch Konformationsänderung. Dann folgt natürlich auch, dass die Bindung des Inhibitors die Affinität des Enzymes für das Substrat nicht ändert und $K_{s}=K_{ss}$ . Wegen des Zusammenhangs zwischen $K_{s}$ und $K_{m}$ ändert die Bindung von Inhibitor also auch nicht $K_{m}$ .

Es lässt sich nun zeigen (durch Substitution und Eliminierung aus den Definitionen von $K_{i},K_{ii},K_{s}$ und $K_{ss}$ ), dass $K_{i}/K_{ii}=K_{s}/K_{ss}$ . Wenn also $K_{i}<K_{ii}$ , dann folgt $K_{s}<K_{ss}$ und die scheinbare $K_{m}$ steigt mit $[\mathrm {I} ]$ . Falls andererseits $K_{i}>K_{ii}$ , dann folgt $K_{s}>K_{ss}$ und die scheinbare $K_{m}$ sinkt mit steigendem $[\mathrm {I} ]$ .

Die nicht-kompetitive Hemmung führt im Lineweaver-Burk-Diagramm zu einer Schar von Geraden mit gemeinsamen Schnittpunkt links von der y-Achse, der Schnittpunkt liegt auf der x-Achse wenn $K_{i}=K_{ii}$ , er liegt über der x-Achse falls $K_{i}<K_{ii}$ und unter der x-Achse falls $K_{i}>K_{ii}$ .

Gemischt-kompetitive Hemmung

Der Mechanismus dieses Hemmtyps (der in der Praxis von geringer Bedeutung ist) ähnelt der nicht-kompetitiven Hemmung, allerdings hat der EIS-Komplex noch eine katalytische Aktivität. Auch das Lineweaver-Burk-Diagramm sieht aus wie bei der nicht-kompetitiven Hemmung (mit allen 3 Möglichkeiten). Im sog. Sekundärdiagramm (Steigung bzw. y-Schnittpunkt im Lineweaver-Burk-Diagram als Funktion von $[\mathrm {I} ]$ ) sieht man aber im Falle der nicht-kompetitiven Hemmung Geraden, im Falle der gemischt-kompetitiven jedoch Kurven.

Siehe auch

Allosterie
Crabtree-Effekt
Energieladung
exergon
Fließgleichgewicht
Mehrsubstratreaktion
Multienzymkomplexe
Pasteur-Effekt
Substratzyklus
Wechselzahl

Literatur

H. Bisswanger: Enzymkinetik – Theorie und Methoden. 3. Auflage. Wiley-VCH, Weinheim 2000, ISBN 978-3-527-30096-9.
E. Buxbaum: Fundamentals of protein structure and function. Springer, New York 2007, ISBN 978-0-387-26352-6.
G. E. Briggs, J. B. Haldane: A Note on the Kinetics of Enzyme Action. In: Biochemical Journal. Band 19, Nr. 2, 1925, S. 338–229; PMID 16743508.
W. W. Cleland: The kinetics of enzyme-catalyzed reactions with two or more substrates or products. In: Biochimica et Biophysica Acta. Band 67, 1963, S. 104–137, 173–187, 188–196.
R. Eisenthal, A. Cornish-Bowden: The direct linear plot. A new graphical procedure for estimating enzyme kinetic parameters. In: Biochemical Journal. Band 139, Nr. 3, 1974, S. 715–720; PMID 4854723.
J. B. S. Haldane: Graphical methods in enzyme chemistry. In: Nature. Band 179, 1957, S. 832.
V. Henri: Theorie generale de l’action de quelques diastases. In: Comptes rendues l’Academie des sciences. Band 135, 1902, S. 916–919.
A. V. Hill: The possible effects of the aggregation of the molecules of haemoglobin on its dissociation curves. In: The Journal of Physiology Band 40, Supplement, 1910, S. iv–vii.
L. Michaelis, M. L. Menten: Die Kinetik der Invertin-Wirkung. In: Biochemische Zeitschrift. Band 49, 1913, S. 333–369.
I. H. Segel: Enzyme Kinetics. Wiley, New York 1975 (Nachdruck 1993).
S. P. L. Sørensen: Enzymstudien II. Über die Messung und Bedeutung der Wasserstoffionenkonzentration bei enzymatischen Prozessen. In: Biochemische Zeitschrift. Band 21, 1909, S. 131–304.

Weblinks

Wikibooks: Formelsammlung Chemie/ Spezifische Kinetiken – Lern- und Lehrmaterialien

Peter Birch:An Introduction to Enzyme Kinetics. (Memento vom 28. April 2009 im Internet Archive) Department of Biological Sciences, University of Paisley.
Private Internetseite zur Enzymkinetik

Einzelnachweise

↑ Leonor Michaelis, Maud Leonora Menten: Die Kinetik der Invertinwirkung. In: Biochemische Zeitschrift. Band 49, 1913, ISSN 0366-0753, S. 333–369, urn:nbn:de:hebis:30-1090119.
↑ Die Darstellung orientiert sich in freier Formulierung der hier genannten Quelle.
↑ A.V. Hill, "The possible effects of the aggregation of the molecules of haemoglobin on its dissociation curves", J Physiol 1910, 40, S. iv–vii
↑ vgl. z. B. Jachen Denoth: „Theoretische Betrachtungen zur maximalen Leistung im Ausdauersport bei einem durch die maximale Sauerstoffaufnahme begrenzten Energieverbrauch“ in: Schweizer Zeitschrift für Sportmedizin und Sporttraumatologie 2008, 65 (2), S. 77–81
↑ z. B. zur Beschreibung einer Michaelis-Menten-Gleichung in: Hartmut Bossel: "Modellbildung und Simulation", Springer-Verlag, 13. März 2013, S. 271
↑ Hans Bisswanger: „Enzyme: Struktur, Kinetik und Anwendungen“, John Wiley & Sons, 29. Juni 2015, Box 11.2
↑ Berg/Stryer/Tymoczko: Biochemie, S. 214, Springer-Verlag, 27. Februar 2015.
↑ Schemazeichnung für die aufgeführten drei Möglichkeiten in https://images.slideplayer.org/1/649096/slides/slide_39.jpg
↑ Das Diagramm ist der englischsprachigen Wikipedia (Seite: Hill equation (biochemistry)) entnommen, der Kommentar unabhängig formuliert.
↑ H. Lineweaver, D. Burk: The Determination of Enzyme Dissociation Constants. In: Journal of the American Chemical Society, 56, 1934, S. 658–666. doi:10.1021/ja01318a036.
↑ Hanes, CS. (1932). Studies on plant amylases: The effect of starch concentration upon the velocity of hydrolysis by the amylase of germinated barley. In: Biochemical Journal 26: 1406–1421; PMID 16744959; PMC 1261052 (freier Volltext).
↑ Das Diagramm ist der englischsprachigen Wikipedia (Seite: Hill equation (biochemistry)) entnommen, der Kommentar unabhängig formuliert.
↑ 'The hemoglobin system. IV. The oxygen dissociation curve of hemoglobin' in: J Biol Chem 63, 1925, S. 529–545

[1] Leonor Michaelis, Maud Leonora Menten: Die Kinetik der Invertinwirkung. In: Biochemische Zeitschrift. Band 49, 1913, ISSN 0366-0753, S. 333–369, urn:nbn:de:hebis:30-1090119.

[2] Die Darstellung orientiert sich in freier Formulierung der hier genannten Quelle.

[3] A.V. Hill, "The possible effects of the aggregation of the molecules of haemoglobin on its dissociation curves", J Physiol 1910, 40, S. iv–vii

[4] vgl. z. B. Jachen Denoth: „Theoretische Betrachtungen zur maximalen Leistung im Ausdauersport bei einem durch die maximale Sauerstoffaufnahme begrenzten Energieverbrauch“ in: Schweizer Zeitschrift für Sportmedizin und Sporttraumatologie 2008, 65 (2), S. 77–81

[5] z. B. zur Beschreibung einer Michaelis-Menten-Gleichung in: Hartmut Bossel: "Modellbildung und Simulation", Springer-Verlag, 13. März 2013, S. 271

[6] Hans Bisswanger: „Enzyme: Struktur, Kinetik und Anwendungen“, John Wiley & Sons, 29. Juni 2015, Box 11.2

[7] Berg/Stryer/Tymoczko: Biochemie, S. 214, Springer-Verlag, 27. Februar 2015.

[8] Schemazeichnung für die aufgeführten drei Möglichkeiten in https://images.slideplayer.org/1/649096/slides/slide_39.jpg

[9] Das Diagramm ist der englischsprachigen Wikipedia (Seite: Hill equation (biochemistry)) entnommen, der Kommentar unabhängig formuliert.

[10] H. Lineweaver, D. Burk: The Determination of Enzyme Dissociation Constants. In: Journal of the American Chemical Society, 56, 1934, S. 658–666. doi:10.1021/ja01318a036.

[11] Hanes, CS. (1932). Studies on plant amylases: The effect of starch concentration upon the velocity of hydrolysis by the amylase of germinated barley. In: Biochemical Journal 26: 1406–1421; PMID 16744959; PMC 1261052 (freier Volltext).

[12] Das Diagramm ist der englischsprachigen Wikipedia (Seite: Hill equation (biochemistry)) entnommen, der Kommentar unabhängig formuliert.

[13] 'The hemoglobin system. IV. The oxygen dissociation curve of hemoglobin' in: J Biol Chem 63, 1925, S. 529–545

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Enzymkinetik

Inhaltsverzeichnis

Theorie für Enzyme mit einer Substratbindungsstelle

Theorie für Enzyme mit mehreren Substratbindungsstellen

Die Hill-Gleichung und ihre Herleitung aus dem Massenwirkungsgesetz

Weitere Darstellung für θ und für v. Die Sättigungsfunktion